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山楂中主要活性成分的HPLC及HPCE法分析研究

文献综述第1-18页
 1 山楂中的化学成分发第8-12页
  1.1 黄酮类成分第8-11页
  1.2 黄烷醇类成分第11页
  1.3 二萜酸类成分第11页
  1.4 其它成分第11-12页
 2 对山楂中化学成分分析检测的研究进展第12-13页
 3 高效液相色谱及高效毛细管电泳法的应用现状第13-18页
  3.1 高效液相色谱分析方法第13-15页
   3.1.1 高效液相色谱法在食品分析及药品分析领域的应用第14页
   3.1.2 色谱分析方法的发展及优化第14-15页
  3.2 高效毛细管电泳分析方法第15-18页
   3.2.1 毛细管电泳在食品和药品分析领域的应用第15-16页
   3.2.2 毛细管电泳的发展方向第16页
   3.2.3 毛细管电泳与液相色谱的交叉第16-18页
引言第18-20页
材料与方法第20-24页
 1 仪器与试剂第20页
  1.1 仪器第20页
   1.1.1 高效液相色谱法所使用仪器第20页
   1.1.2 高效毛细管电泳法所使用仪器第20页
  1.2 试剂第20页
 2 样品来源与处理方法第20-24页
  2.1 样品来源第20-21页
  2.2 样品的处理方法第21页
  2.3 实验方法第21-24页
   2.3.1 黄烷醇类化合物(原花色素B_2)的制备第21页
   2.3.2 山楂样品中牡荆素-2”-鼠李糖、芦丁、金丝桃苷、牡荆素测定的色谱条件第21-22页
   2.3.3 测定山楂样品中原花色素B2、绿原酸及表儿茶素的色谱条件第22页
   2.3.4 测定山楂样品中熊果酸和齐墩果酸的色谱条件第22-23页
   2.3.5 测定山楂中牡荆素-2”-鼠李糖、芦丁、金丝桃苷、牡荆素的电泳条件第23页
   2.3.6 山楂样品中表儿茶素、牡荆素-2”-O-鼠李糖、金丝桃苷、芦丁、牡荆素和绿原酸第23-24页
结果与讨论第24-52页
 1 分离制备的原花色素B_2NMR分析数据及解析结果第24页
 2 高效液相色谱法测定山楂样品中牡荆素-2”-鼠李糖、芦丁、金丝桃苷、牡荆素第24-28页
  2.1 检测条件的选择第24页
  2.2 流动相的选择第24-25页
  2.3 分析组分的定性第25页
  2.4 精密度、线性范围与检出限第25-26页
  2.5 回收率的测定第26页
  2.6 实际样品分析第26-28页
 3 高放液相色谱法检测山楂样品中表儿茶素,原花色素B_2和绿原酸第28-31页
  3.1 检测波长的选择第28页
  3.2 色谱流动相的选择第28-29页
  3.3 分离组分的定性第29页
  3.4 方法的精密度、线性范围、检出限第29-30页
  3.5 回收率的测定第30页
  3.6 实际样品的分析第30-31页
 4 高效液相色谱测定山楂中熊果酸和齐墩果酸第31-34页
  4.1 检测波长的选择第31-32页
  4.2 色谱流动相的选择第32页
  4.3 精密度、回归方程及线性范围第32页
  4.4 回收率的测定第32页
  4.5 实际样品分析第32-34页
 5 毛细管电泳法分离测定山楂中的牡荆素-2”-O-鼠李糖,芦丁,金丝桃苷,牡荆素第34-40页
  5.1 缓冲液的pH及种类对分离的影响第34-35页
  5.2 有机添加剂的种类及其浓度对分离度和柱效的影响第35-36页
  5.3 缓冲液的浓度对分离情况的影响第36-37页
  5.4 定性方法第37-38页
  5.5 精密度、回归方程及线性范围第38页
  5.6 回收率的测定与实际样品的分析第38-40页
 6 山楂样品中表儿茶素、牡荆素-2”-O-鼠李糖、金丝桃苷、芦丁、牡荆素和绿第40-48页
  6.1 缓冲液的pH及种类对分离的影响第40页
  6.2 缓冲液的种类及浓度对分离情况的影响第40-41页
  6.3 添加剂的种类和浓度对分离情况的影响第41-42页
  6.4 标准物的定性第42-44页
  6.5 分析方法的评价第44-45页
  6.6 回收率的测定与实际样品的分析第45-48页
 7 高效液相色谱法对山楂活性成分的动态分析第48-52页
  7.1 生长期山楂果黄烷醇和酚酸的含量变化第48-49页
  7.2 山楂叶中黄酮的含量变化第49-50页
  7.3 山楂三萜酸的含量变化第50-52页
结论第52-54页
参考文献第54-63页
附录第63-66页
英文摘要第66-68页
致谢第68-69页

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