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基于鞭毛蛋白载体的口蹄疫表位疫苗研究

摘要第6-7页
abstract第7-8页
英文缩略表第13-14页
第一章 引言第14-35页
    1.1 选题的目的和意义第14页
    1.2 研究思路和主要内容第14-15页
    1.3 风险评估及规避方案第15-16页
    1.4 递呈抗原表位的载体在口蹄疫表位疫苗中的应用第16-20页
        1.4.1 前言第16页
        1.4.2 构建口蹄疫表位疫苗的关键抗原表位第16-17页
        1.4.3 免疫刺激复合物作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第17页
        1.4.4 脂质体作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第17-18页
        1.4.5 纳米颗粒作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第18页
        1.4.6 载体蛋白作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第18-19页
        1.4.7 病毒活载体作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第19页
        1.4.8 细菌活载体作为递呈口蹄疫抗原表位的载体第19-20页
        1.4.9 小结第20页
    1.5 鞭毛蛋白作为一种疫苗佐剂的研究进展第20-35页
        1.5.0 前言第20-21页
        1.5.1 鞭毛蛋白的结构特征第21-22页
        1.5.2 鞭毛蛋白介导的免疫反应第22-25页
        1.5.3 鞭毛蛋白作为佐剂与疫苗抗原混合免疫第25-26页
        1.5.4 在活细菌株中鞭毛蛋白与外源抗原的嵌合表达或共展示第26-28页
        1.5.5 鞭毛蛋白和抗原结合的重组融合蛋白第28-30页
        1.5.6 鞭毛蛋白作为免疫增强剂结合于纳米颗粒第30页
        1.5.7 鞭毛蛋白作为抗肿瘤免疫佐剂第30-31页
        1.5.8 TLR激动剂的联合递送第31-32页
        1.5.9 基于鞭毛蛋白载体的候选疫苗的临床研究第32-34页
        1.5.10 小结第34-35页
第二章 Flgellin-FMDV重组融合蛋白的构建与表达第35-53页
    2.1 材料和方法第35-41页
        2.1.1 质粒和菌株第35-36页
        2.1.2 试验试剂及耗材第36-37页
        2.1.3 试验仪器和设备第37-38页
        2.1.4 Flgellin-FMDV重组融合基因的构建第38页
        2.1.5 Flgellin-FMDV重组质粒的提取第38页
        2.1.6 Flgellin-FMDV重组质粒的转化第38页
        2.1.7 Flgellin-FMDV重组融合基因的表达第38-39页
            2.1.7.1 Flgellin-FMDV重组融合蛋白的小量表达第38-39页
            2.1.7.2 Flgellin-FMDV重组融合蛋白的大量表达第39页
        2.1.8 重组融合蛋白的纯化第39-40页
            2.1.8.1 可溶性重组融合蛋白的纯化第39页
            2.1.8.2 重组融合蛋白包涵体的纯化第39-40页
            2.1.8.3 重组融合蛋白包涵体蛋白的复性第40页
        2.1.9 重组融合蛋白内毒素的去除第40页
        2.1.10 重组融合蛋白内毒素的测定第40-41页
        2.1.11 SDS-PAGE第41页
        2.1.12 Western blotting分析第41页
    2.2 结果第41-50页
        2.2.1 Flgellin-FMDV重组融合基因的构建第41-44页
        2.2.2 Flgellin-FMDV重组融合基因的酶切鉴定第44-45页
        2.2.3 Flgellin-FMDV重组融合蛋白的表达和纯化第45-48页
        2.2.4 Flgellin-FMDV重组融合蛋白蛋白浓度的测定第48-49页
        2.2.5 Flgellin-FMDV重组融合蛋白的残余内毒素含量的测定第49-50页
    2.3 讨论第50-51页
    2.4 小结第51-53页
第三章 重组融合蛋白的功能鉴定第53-59页
    3.1 材料和方法第53-55页
        3.1.1 质粒和细胞第53页
        3.1.2 试验试剂及耗材第53-54页
        3.1.3 试验仪器和设备第54页
        3.1.4 口蹄疫O型液相阻断ELISA(LPB-ELISA)第54页
        3.1.5 双抗夹心ELISA法分析重组蛋白的抗原性第54-55页
        3.1.6 hTLR5 质粒转染RAW264.7 细胞第55页
        3.1.7 重组融合蛋白的TLR5 特异性生物测定第55页
    3.2 结果第55-57页
        3.2.1 重组融合蛋白的抗原性第55-56页
        3.2.2 重组融合蛋白的TLR5 生物活性第56-57页
    3.3 讨论第57-58页
    3.4 小结第58-59页
第四章 重组融合蛋白的免疫原性及保护效力第59-76页
    4.1 材料和方法第59-62页
        4.1.1 病毒、细胞与实验动物第59页
        4.1.2 试验试剂及耗材第59-60页
        4.1.3 试验仪器和设备第60页
        4.1.4 小鼠免疫第60页
        4.1.5 豚鼠免疫和攻毒保护试验第60-61页
        4.1.6 豚鼠的GPID50测定第61页
        4.1.7 血清抗体的ELISA检测第61页
        4.1.8 病毒中和试验第61-62页
        4.1.9 淋巴细胞增殖试验第62页
        4.1.10 细胞因子水平检测第62页
        4.1.11 统计学分析第62页
    4.2 结果第62-74页
        4.2.1 鞭毛蛋白-FMDV融合蛋白诱导小鼠产生高水平FMDV特异性IgG反应第62-65页
        4.2.2 FTME融合蛋白通过肌肉和皮下途径诱导了类似强度的抗体反应第65-66页
        4.2.3 FTME与其它指定佐剂之间没有观察到协同作用第66-68页
        4.2.4 鞭毛蛋白-FMDV融合蛋白在豚鼠体内的免疫原性第68-70页
        4.2.5 鞭毛蛋白-FMDV蛋白诱导豚鼠细胞因子水平和细胞免疫应答第70-72页
        4.2.6 豚鼠测毒试验第72-73页
        4.2.7 重组融合蛋白对豚鼠攻毒的保护效力第73-74页
    4.3 讨论第74-75页
    4.4 小结第75-76页
第五章 全文结论第76-77页
参考文献第77-92页
附录第92-94页
致谢第94-95页
作者简历第95页

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