| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第1章 引言 | 第7-27页 |
| 1.1 植物激素及相应受体研究进展 | 第7-19页 |
| 1.1.1 植物激素及相应受体研究历史 | 第7页 |
| 1.1.2 植物激素及受体介导的信号转导机制 | 第7-18页 |
| 1.1.3 植物激素多层次调控植物的生长发育 | 第18-19页 |
| 1.2 水杨酸及受体介导的信号转导机制 | 第19-25页 |
| 1.2.1 水杨酸及受体是植物免疫应答反应中的重要因子 | 第19-20页 |
| 1.2.2 水杨酸潜在受体保守结构域预测 | 第20-22页 |
| 1.2.3 水杨酸潜在受体NPR4介导的信号转导机制 | 第22-25页 |
| 1.3 课题研究目的及研究意义 | 第25-27页 |
| 第2章 材料与方法 | 第27-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-32页 |
| 2.1.1 质粒、载体 | 第27-28页 |
| 2.1.2 实验菌株 | 第28页 |
| 2.1.3 实验试剂与耗材 | 第28-31页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-47页 |
| 2.2.1 培养基及常用缓冲液制备 | 第32-35页 |
| 2.2.2 基因克隆 | 第35-38页 |
| 2.2.3 蛋白表达与纯化 | 第38-44页 |
| 2.2.4 蛋白结晶学原理 | 第44-47页 |
| 第3章 蛋白的表达纯化与结晶 | 第47-69页 |
| 3.1 NPR4全长蛋白纯化及晶体筛选 | 第47-54页 |
| 3.1.1 NPR4-His标签蛋白纯化及晶体筛选 | 第47-50页 |
| 3.1.2 NPR4-Ppase-His-BL21(DE3)蛋白纯化 | 第50-51页 |
| 3.1.3 NPR4-strep-His-BL21(DE3)蛋白纯化及晶体筛选 | 第51-52页 |
| 3.1.4 NPR4-His在 BL21(DE3)plysS中的表达纯化 | 第52-53页 |
| 3.1.5 NPR4-His-Transetta(DE3)表达纯化及晶体筛选 | 第53页 |
| 3.1.6 分析与讨论 | 第53-54页 |
| 3.2 NPR4截短体蛋白纯化及晶体筛选 | 第54-58页 |
| 3.2.1 NPR4(30~574AA)-His在 Bl21(DE3)中的表达纯化及晶体筛选 | 第55-56页 |
| 3.2.2 NPR4(40~574AA)-His在 Bl21(DE3)中的表达纯化及晶体筛选 | 第56页 |
| 3.2.3 NPR4(1~565AA)-His在 Bl21(DE3)中的表达纯化及晶体筛选 | 第56-57页 |
| 3.2.4 NPR4(1~560AA)-His在 Bl21(DE3)中的表达纯化及晶体筛选 | 第57-58页 |
| 3.2.5 分析与讨论 | 第58页 |
| 3.3 NPR4突变体蛋白表达纯化及晶体筛选 | 第58-60页 |
| 3.3.1 NPR4(C72A)的表达纯化及晶体筛选 | 第59页 |
| 3.3.2 NPR4(C198A&C207A)的表达纯化及晶体筛选 | 第59-60页 |
| 3.3.3 分析与讨论 | 第60页 |
| 3.4 限制酶酶切NPR4实验及晶体筛选 | 第60-67页 |
| 3.4.1.1 限制酶酶切NPR4预实验及质谱结果 | 第61-63页 |
| 3.4.2 NPR4截短体的试表达 | 第63-64页 |
| 3.4.3 限制酶酶切NPR4蛋白的大量纯化 | 第64-67页 |
| 3.4.4 分析与讨论 | 第67页 |
| 3.5 NPR4蛋白晶体 | 第67-69页 |
| 第4章 结论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
