摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
第一章 文献综述 | 第13-23页 |
1.1 小麦条锈病 | 第13页 |
1.2 植物系统获得性抗性研究进展 | 第13-16页 |
1.2.1 系统获得性抗性中的信号传导 | 第14-15页 |
1.2.2 SAR同其他抗病反应过程的交互作用 | 第15-16页 |
1.3 水杨酸研究进展 | 第16-19页 |
1.3.1 水杨酸的合成及代谢 | 第16-18页 |
1.3.2 SA受体蛋白 | 第18-19页 |
1.4 NPR1研究进展 | 第19-22页 |
1.4.1 NPR1的降解在植物免疫过程中的作用 | 第20页 |
1.4.2 NPR1所介导的转录反应 | 第20-21页 |
1.4.3 NPR1与其他SAR原件的相互作用 | 第21-22页 |
1.5 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
第二章 小麦与条锈菌亲和与非亲和互作过程中水杨酸变化量的测定 | 第23-32页 |
2.1 实验材料、仪器和方法 | 第23页 |
2.1.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.2 仪器 | 第23页 |
2.1.3 试剂 | 第23页 |
2.2 试验方法 | 第23-26页 |
2.2.1 植物材料接种与采样 | 第23页 |
2.2.2 水杨酸提取 | 第23-24页 |
2.2.3 标准品的准备 | 第24页 |
2.2.4 样品的测定方法 | 第24页 |
2.2.5 回收率的测定 | 第24页 |
2.2.6 总RNA的提取和cDNA第一链的合成 | 第24-25页 |
2.2.7 Quantitative Real-Time PCR分析 | 第25-26页 |
2.3 结果与分析 | 第26-30页 |
2.3.1 离子化模式与定量离子对的选择 | 第26页 |
2.3.2 流动相的选择 | 第26-27页 |
2.3.3 提取溶剂的选择 | 第27-28页 |
2.3.4 准确度 | 第28页 |
2.3.5 精确度 | 第28页 |
2.3.6 线性关系与检出限 | 第28-29页 |
2.3.7 小麦与条锈菌亲和与非亲和互作过程中水杨酸的动态变化 | 第29-30页 |
2.3.8 水杨酸合成基因TaICS1和TaPAL1表达模式 | 第30页 |
2.4 结果讨论 | 第30-32页 |
第三章 小麦基因TaNPR1/3,TaEDS1的分离克隆及功能分析 | 第32-54页 |
3.1 实验材料、试剂和仪器 | 第32页 |
3.1.1 材料 | 第32页 |
3.1.2 试剂及仪器 | 第32页 |
3.2 实验方法 | 第32-37页 |
3.2.1 实验材料的准备 | 第32-33页 |
3.2.2 基因克隆 | 第33-35页 |
3.2.3 PCR产物的亚克隆及测序 | 第35-37页 |
3.2.4 总RNA的提取、cDNA第一链的合成及Quantitative Real-Time PCR分析 | 第37页 |
3.3 序列分析 | 第37页 |
3.3.1 相似性和同源性比对 | 第37页 |
3.3.2 氨基酸序列分析 | 第37页 |
3.3.3 进化树分析 | 第37页 |
3.4 条锈菌诱导处理 | 第37页 |
3.5 激素迫诱导处理 | 第37页 |
3.6 BSMV-VIGS介导的基因沉默 | 第37-39页 |
3.6.0 BSMV-VIGS重组载体构建 | 第37-38页 |
3.6.1 BSMV-VIGS载体的线性化 | 第38页 |
3.6.2 体外转录反应 | 第38-39页 |
3.6.3 BSMV重组病毒的接种 | 第39页 |
3.6.4 组织病理学观察 | 第39页 |
3.7 结果与分析 | 第39-45页 |
3.7.1 小麦叶片总RNA提取 | 第39-40页 |
3.7.2 小麦TaNPR1,TaNPR3及TaEDS1的全长的克隆 | 第40-41页 |
3.7.3 小麦TaNPR1/TaNPR3及TaEDS1序列分析 | 第41-45页 |
3.8 小麦TaNPR1/TaNPR3及TaEDS1基因表达特征分析 | 第45-47页 |
3.8.1 小麦TaNPR1/TaNPR3及TaEDS1在小麦与条锈菌互作体系中的表达模式 | 第45页 |
3.8.2 外源激素诱导后TaNPR1/TaNPR3、TaEDS1因的表达特征 | 第45-47页 |
3.9 TaNPR1、TaNPR3及TaEDS1的基因沉默分析 | 第47-51页 |
3.10 结论与讨论 | 第51-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
附录1 | 第60-62页 |
附录2 | 第62-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
作者简介 | 第65页 |