| 中文摘要 | 第11-13页 |
| 英文摘要 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-24页 |
| 1.1 微管和植物微管结合蛋白 | 第15-17页 |
| 1.1.1 微管 | 第15页 |
| 1.1.2 植物微管结合蛋白 | 第15-17页 |
| 1.2 微管结合蛋白AtMAP18的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 SA在逆境中的作用 | 第18-21页 |
| 1.3.1 水杨酸对生物胁迫的应答反应 | 第18-20页 |
| 1.3.2 水杨酸对非生物胁迫的应答反应 | 第20-21页 |
| 1.4 植物激素与微管骨架的关系 | 第21-23页 |
| 1.4.1 植物激素与微管骨架的关系 | 第21-22页 |
| 1.4.2 SA参与微管骨架的动态变化 | 第22-23页 |
| 1.5 本研究的目的和思路 | 第23-24页 |
| 第二章 外源SA处理下AtMAP18的表达分析 | 第24-32页 |
| 2.1 外源SA处理下qRT-PCR分析AtMAP18的表达量变化 | 第24-28页 |
| 2.1.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.2 结果与分析 | 第26-28页 |
| 2.2 外源SA处理下GUS活性分析AtMAP18的表达量变化 | 第28-30页 |
| 2.2.1 材料与方法 | 第28-29页 |
| 2.2.2 结果与分析 | 第29-30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-31页 |
| 2.4 结论 | 第31-32页 |
| 第三章 外源SA处理对AtMAP18转基因植株种子萌发的影响 | 第32-37页 |
| 3.1 材料与方法 | 第32-33页 |
| 3.1.1 试验仪器 | 第32页 |
| 3.1.2 试验材料与试剂 | 第32页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-36页 |
| 3.3 讨论 | 第36页 |
| 3.4 结论 | 第36-37页 |
| 第四章 外源SA处理对AtMAP18转基因植株生长的影响 | 第37-43页 |
| 4.1 材料与方法 | 第37页 |
| 4.1.1 试验仪器 | 第37页 |
| 4.1.2 试验材料与试剂 | 第37页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第37页 |
| 4.2 结果与分析 | 第37-41页 |
| 4.3 讨论 | 第41-42页 |
| 4.4 结论 | 第42-43页 |
| 第五章 外源SA处理下AtMAP18基因缺失对微管动态的影响 | 第43-47页 |
| 5.1 材料和方法 | 第43页 |
| 5.1.1 试验仪器 | 第43页 |
| 5.1.2 试验材料与试剂 | 第43页 |
| 5.1.3 试验方法 | 第43页 |
| 5.2 结果与分析 | 第43-45页 |
| 5.2.1 外源SA处理下拟南芥WT子叶中微管动态变化的观察 | 第43-44页 |
| 5.2.2 外源SA处理下拟南芥Atmap18子叶中微管动态变化的观察 | 第44页 |
| 5.2.3 外源SA处理下拟南芥野生型和Atmap18子叶中的稳定微管数量 | 第44-45页 |
| 5.3 讨论 | 第45-46页 |
| 5.4 结论 | 第46-47页 |
| 第六章 外源SA处理下AtMAP18转基因植株对SA响应基因表达的影响 | 第47-51页 |
| 6.1 材料与方法 | 第47页 |
| 6.1.1 试验仪器 | 第47页 |
| 6.1.2 试验试剂与材料 | 第47页 |
| 6.1.3 试验方法 | 第47页 |
| 6.2 结果与分析 | 第47-49页 |
| 6.2.1 总RNA提取结果 | 第47-48页 |
| 6.2.2 qRT-PCR检测SA诱导基因及胁迫响应基因的表达量 | 第48-49页 |
| 6.3 讨论 | 第49-50页 |
| 6.4 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第61-62页 |
