摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
缩略词表 | 第14-15页 |
前言 | 第15-17页 |
第一章 合欢皮木脂素类物质抗焦虑主要活性部位作用机制的整体研究.. | 第17-35页 |
1 实验材料 | 第17-18页 |
1.1 仪器 | 第17页 |
1.2 试剂 | 第17-18页 |
1.3 实验动物及分组 | 第18页 |
2 实验方法 | 第18-27页 |
2.1 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中GABA_AR和5-HT_(1A)R蛋白表达量的影响 | 第18-23页 |
2.2 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中GABA_AR和5-HT_(1A)RmRNA表达量的影响 | 第23-26页 |
2.3 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中PKA,CREB,BDNF和TRKB蛋白表达量的影响 | 第26页 |
2.4 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中cAMP水平的影响 | 第26-27页 |
2.5 数据分析 | 第27页 |
3 实验结果 | 第27-32页 |
3.1 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中GABA_AR和5-HT_(1A)R蛋白表达量的影响 | 第27-29页 |
3.2 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中GABA_AR和5-HT_(1A)RmRNA表达量的影响 | 第29-30页 |
3.3 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中PKA,CREB,BDNF和TRKB蛋白表达量的影响 | 第30-31页 |
3.4 S-75部位对急性应激后高架十字迷宫模型小鼠脑组织中cAMP水平的影响 | 第31-32页 |
4 讨论 | 第32-34页 |
5 结论 | 第34-35页 |
第二章 合欢皮木脂素类物质抗焦虑主要活性部位对皮质酮诱导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第35-53页 |
1 实验材料 | 第35-37页 |
1.1 仪器 | 第35页 |
1.2 试剂与试药 | 第35-36页 |
1.3 细胞株 | 第36-37页 |
2 实验方法 | 第37-45页 |
2.1 PC12细胞培养 | 第37页 |
2.2 皮质酮(corticosterone,CORT)诱导PC12细胞损伤模型制备 | 第37-38页 |
2.3 受体阻断剂及阳性药的浓度筛选 | 第38-39页 |
2.4 S-75部位对皮质酮诱导的PC12细胞的保护作用 | 第39-40页 |
2.5 S-75部位及其协同受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中5-HT_(1A)R和GABA_ARmRNA表达量的影响 | 第40-44页 |
2.6 S-75部位及5-HT_(1A)R受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中PKA,CREB,BDNF和TRKB蛋白表达量的影响 | 第44-45页 |
2.7 S-75部位及5-HT_(1A)R受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中cAMP水平的影响 | 第45页 |
2.8 数据分析 | 第45页 |
3 实验结果 | 第45-52页 |
3.1 皮质酮对PC12细胞损伤的MTT测定结果 | 第45-46页 |
3.2 受体阻断剂及阳性药的浓度筛选 | 第46-48页 |
3.3 S-75部位对皮质酮诱导的PC12细胞增殖的影响 | 第48-49页 |
3.4 S-75部位及其协同受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中5-HT_(1A)R和GABA_ARmRNA表达量的影响 | 第49-50页 |
3.5 S-75部位及5-HT_(1A)R受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中PKA,CREB,BDNF和TRKB蛋白表达量的影响 | 第50-51页 |
3.6 S-75部位及5-HT_(1A)R受体阻断剂对皮质酮诱导的PC12细胞中cAMP水平的影响 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52页 |
5 结论 | 第52-53页 |
第三章 木脂素类物质主要活性成分对皮质酮损伤的PC12细胞凋亡及线粒体凋亡信号通路的影响 | 第53-73页 |
1 实验材料 | 第53-54页 |
1.1 仪器 | 第53页 |
1.2 试剂及试药 | 第53-54页 |
2 实验方法 | 第54-59页 |
2.1 S-75部位及其主要活性成分对皮质酮诱导的PC12细胞增殖的影响 | 第54-55页 |
2.2 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞的保护作用 | 第55页 |
2.3 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞LDH渗漏的影响 | 第55-56页 |
2.4 AnnexinV-FITC/PI双染法流式细胞术检测SRG对皮质酮诱导的PC12细胞凋亡的影响 | 第56页 |
2.5 TUNEL原位凋亡检测试剂盒(荧光法检测DNA片段化)检测SRG对皮质酮诱导的PC12细胞凋亡的影响 | 第56-57页 |
2.6 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞内[Ca~(2+)]的影响 | 第57-58页 |
2.7 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞线粒体膜电位(?Ψm)的影响 | 第58页 |
2.8 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞中CREB,BDNF,Bcl-2,Bax,细胞色素C(Cyt-C)和Caspase-3蛋白表达量的影响 | 第58-59页 |
2.9 数据分析 | 第59页 |
3 实验结果 | 第59-70页 |
3.1 S-75部位及其主要活性成分对皮质酮诱导的PC12细胞增殖的影响 | 第59-61页 |
3.2 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞的保护作用 | 第61-63页 |
3.3 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞LDH渗漏的影响 | 第63-64页 |
3.4 AnnexinV-FITC/PI双染法流式细胞术检测SRG对皮质酮诱导的PC12细胞凋亡的影响 | 第64-65页 |
3.5 TUNEL原位凋亡检测试剂盒(荧光法检测DNA片段化)检测SRG对皮质酮诱导的PC12细胞凋亡的影响 | 第65-66页 |
3.6 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞内[Ca~(2+)]的影响 | 第66-67页 |
3.7 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞线粒体膜电位(?Ψm)的影响. | 第67-68页 |
3.8 SRG对皮质酮诱导的PC12细胞中CREB,BDNF,Bcl-2,Bax,细胞色素C(Cyt-C)和Caspase-3蛋白表达量的影响 | 第68-70页 |
4 讨论 | 第70-72页 |
5 结论 | 第72-73页 |
结语与创新 | 第73-74页 |
文献综述 | 第74-83页 |
参考文献 | 第83-92页 |
发表论文 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |