| 中文摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第15-76页 |
| 1.1 自修复凝胶 | 第15-29页 |
| 1.1.1 自修复凝胶的分类 | 第16-17页 |
| 1.1.2 物理自修复凝胶 | 第17-22页 |
| 1.1.2.1 疏水相互作用 | 第18-19页 |
| 1.1.2.2 主-客体相互作用 | 第19页 |
| 1.1.2.3 氢键 | 第19-20页 |
| 1.1.2.4 聚合物-纳米复合相互作用 | 第20-22页 |
| 1.1.2.5 分子间多相互作用 | 第22页 |
| 1.1.3 化学自修复凝胶 | 第22-29页 |
| 1.1.3.1 苯硼酸酯络合物 | 第23页 |
| 1.1.3.2 二硫键 | 第23-24页 |
| 1.1.3.3 亚胺键(Schiff) | 第24-25页 |
| 1.1.3.4 酰腙键 | 第25-27页 |
| 1.1.3.5 Diels-Alder反应 | 第27-29页 |
| 1.2 自修复凝胶的应用 | 第29-33页 |
| 1.2.1 涂料/密封胶/组织粘合剂 | 第29-30页 |
| 1.2.2 可注射水凝胶在药物/细胞递送领域的应用 | 第30-32页 |
| 1.2.3 自修复凝胶展望 | 第32-33页 |
| 1.3 蛋白质水凝胶 | 第33-44页 |
| 1.3.1 物理交联的蛋白质水凝胶 | 第33-39页 |
| 1.3.1.1 由卷曲螺旋结构域聚集驱动的物理水凝胶 | 第34-36页 |
| 1.3.1.2 由蛋白质-蛋白质/肽相互作用形成的物理水凝胶 | 第36-37页 |
| 1.3.1.3 基于多肽逆温度转变的物理蛋白质水凝胶 | 第37-39页 |
| 1.3.2 化学交联蛋白质水凝胶 | 第39-44页 |
| 1.3.2.1 通过酪氨酸残基交联 | 第40-43页 |
| 1.3.2.2 通过赖氨酸交联 | 第43-44页 |
| 1.3.2.3 通过半胱氨酸残基的硫醇-烯化学交联 | 第44页 |
| 1.4 蛋白质水凝胶的应用 | 第44-55页 |
| 1.4.1 用蛋白质水凝胶模拟肌肉的力学性能 | 第45-48页 |
| 1.4.2 3D生物打印 | 第48-52页 |
| 1.4.3 蛋白质水凝胶的展望 | 第52-55页 |
| 本文立论依据 | 第55-58页 |
| 参考文献 | 第58-76页 |
| 第二章 基于柱芳烃的酶调控快速自修复水凝胶 | 第76-104页 |
| 2.1 设计思路 | 第76-78页 |
| 2.2 实验部分 | 第78-85页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第78页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第78-79页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第79-85页 |
| 2.2.3.1 全甲氧基柱[5]芳烃的合成(1a) | 第79-80页 |
| 2.2.3.2 全羟基柱[5]芳烃的合成(1b) | 第80-81页 |
| 2.2.3.3 全酯化柱[5]芳烃的合成(2a) | 第81-82页 |
| 2.2.3.4 全肼柱[5]芳烃的合成(2b)(成胶因子) | 第82-84页 |
| 2.2.3.5 双醛基PEG_(4000)(DF-PEG_(4000))的合成(成胶因子) | 第84-85页 |
| 2.2.3.6 扫描电子显微镜(SEM)样品的制备方法 | 第85页 |
| 2.2.3.7 流变测试方法 | 第85页 |
| 2.2.3.8 拉伸测试方法 | 第85页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第85-99页 |
| 2.3.1 水凝胶的制备与表征 | 第85-87页 |
| 2.3.2 流变测试结果分析 | 第87-89页 |
| 2.3.3 双酶(GO_x与CAT)活性测试 | 第89-91页 |
| 2.3.3.1 GO_x活性测试(间接法) | 第89-90页 |
| 2.3.3.2 CAT活性测试(直接法) | 第90-91页 |
| 2.3.4 自修复性能的测定 | 第91-96页 |
| 2.3.4.1 切断修复及拉伸测试 | 第91-93页 |
| 2.3.4.2 水凝胶的多段修复实验 | 第93-94页 |
| 2.3.4.3 水凝胶的划痕修复实验 | 第94-95页 |
| 2.3.4.4 水凝胶内部扩散性质的研究 | 第95-96页 |
| 2.3.5 分散碳纳米管的导电水凝胶的制备与表征 | 第96-99页 |
| 2.3.5.1 设计思路 | 第97页 |
| 2.3.5.2 导电水凝胶的制备与表征 | 第97-98页 |
| 2.3.5.3 导电水凝胶的自修复与导电性能研究 | 第98-99页 |
| 2.4 本章小结 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-104页 |
| 第三章 快速自修复的蛋白质水凝胶 | 第104-124页 |
| 3.1 设计思路 | 第104-107页 |
| 3.2 实验部分 | 第107-108页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第107页 |
| 3.2.2 试验仪器 | 第107页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第107-108页 |
| 3.2.3.1 BSA蛋白质水凝胶的制备 | 第107页 |
| 3.2.3.2 红外光谱测试 | 第107页 |
| 3.2.3.3 圆二色谱测试(CD) | 第107-108页 |
| 3.2.3.4 扫描电子显微镜(SEM)表征 | 第108页 |
| 3.2.3.5 流变测试 | 第108页 |
| 3.2.3.6 拉伸测试 | 第108页 |
| 3.2.3.7 光镜测试 | 第108页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第108-118页 |
| 3.3.1 红外光谱分析 | 第108-109页 |
| 3.3.2 BSA还原蛋白质水凝胶的结构研究 | 第109-110页 |
| 3.3.3 BSA还原蛋白质水凝胶自修复性能的研究 | 第110-112页 |
| 3.3.4 BSA还原蛋白质水凝胶划痕修复的研究 | 第112-113页 |
| 3.3.5 BSA还原蛋白质水凝胶流变性质的研究 | 第113-114页 |
| 3.3.6 BSA还原蛋白质水凝胶多断裂界面的自修复研究 | 第114-115页 |
| 3.3.7 CD测试研究 | 第115-116页 |
| 3.3.8 BSA还原蛋白质水凝胶可注射性能的研究 | 第116-117页 |
| 3.3.9 细胞毒性实验结果分析 | 第117-118页 |
| 3.4 本章小结 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-124页 |
| 第四章 模拟肌肉生物力学行为的高伸缩性蛋白质水凝胶 | 第124-140页 |
| 4.1 设计思路 | 第124-126页 |
| 4.2 实验部分 | 第126-128页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第126页 |
| 4.2.2 试验仪器 | 第126页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第126-128页 |
| 4.2.3.1 水凝胶的制备 | 第126页 |
| 4.2.3.2 流变测试方法 | 第126页 |
| 4.2.3.3 拉伸测试方法 | 第126-127页 |
| 4.2.3.4 扫描电子显微镜测试(SEM) | 第127页 |
| 4.2.3.5 原子力显微镜测量(AFM) | 第127页 |
| 4.2.3.6 圆二色谱测试(CD) | 第127页 |
| 4.2.3.7 水凝胶的溶胀实验 | 第127页 |
| 4.2.3.8 蛋白质混合水凝胶的细胞毒性实验 | 第127-128页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第128-136页 |
| 4.3.1 蛋白质水凝胶结构分析 | 第128页 |
| 4.3.2 流变测试结果分析 | 第128-129页 |
| 4.3.3 拉伸测试结果分析 | 第129-132页 |
| 4.3.4 蛋白质混合水凝胶的溶胀实验 | 第132-135页 |
| 4.3.5 细胞毒性实验结果分析 | 第135-136页 |
| 4.4 本章小结 | 第136-137页 |
| 参考文献 | 第137-140页 |
| 结论 | 第140-142页 |
| 作者简历 | 第142页 |
| 博士期间发表的论文 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144页 |
