摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1.1 花青苷合成途径 | 第11-12页 |
1.1.1 花青苷合成相关结构基因 | 第11-12页 |
1.1.2 花青苷合成相关调节基因 | 第12页 |
1.2 小RNA概述 | 第12-18页 |
1.2.1 小RNA的产生 | 第12-14页 |
1.2.2 小RNA作用机制 | 第14-15页 |
1.2.3 小RNA研究方法 | 第15-16页 |
1.2.4 小RNA的功能研究 | 第16-17页 |
1.2.5 小RNA生物学功能 | 第17-18页 |
1.3 WD40基因的研究 | 第18-19页 |
1.3.1 WD40基因的结构 | 第18页 |
1.3.2 WD40基因的功能 | 第18-19页 |
1.4 本研究的目的及意义 | 第19-20页 |
第二章 MdTAS4-siR81(-)靶向MdbHLH3调控苹果果皮花青苷的形成 | 第20-35页 |
2.1 试验材料 | 第20页 |
2.2 试验方法 | 第20-23页 |
2.2.1 花青苷及原花青素总量测定 | 第20页 |
2.2.2 实时荧光定量PCR | 第20-21页 |
2.2.3 利用5’RACE验证TAS4-siR81(-)靶基因切割位点 | 第21-22页 |
2.2.4 小RNA过表达载体构建 | 第22-23页 |
2.2.5 瞬时转化苹果 | 第23页 |
2.2.6 拟南芥转化及筛选 | 第23页 |
2.3 结果与分析 | 第23-32页 |
2.3.1 转录组差异表达分析 | 第23页 |
2.3.2 果实着色中花青苷含量变化 | 第23-25页 |
2.3.3 果实着色过程中MdTAS4-siR81(-)和MdbHLH3表达模式 | 第25页 |
2.3.4 利用5’RACE验证MdTAS4-siR81(-)切割靶基因MdbHLH3 | 第25-26页 |
2.3.5 果皮中MdTAS4-siR81(-)和MdbHLH3瞬时过表达 | 第26-28页 |
2.3.6 MdTAS4-siR81(-)及靶基因MdbHLH3稳定转化拟南芥 | 第28-32页 |
2.4 讨论 | 第32-35页 |
2.4.1 果实着色过程中MdTAS4-siR81(-)和MdbHLH3的变化趋势 | 第32-33页 |
2.4.2 利用5’RACE验证MdTAS4-siR81(-)切割MdbHLH3 | 第33页 |
2.4.3 MdTAS4-siR81(-)靶向MdbHLH3调控花青苷形成 | 第33-35页 |
第三章 苹果WD40蛋白家族的鉴定及表达分析 | 第35-48页 |
3.1 试验材料 | 第35页 |
3.2 试验方法 | 第35-36页 |
3.2.1 苹果WD40基因鉴定及染色体定位 | 第35-36页 |
3.2.2 苹果WD40基因的分类及进化分析 | 第36页 |
3.2.3 苹果WD40基因的内含子/外显子结构 | 第36页 |
3.2.4 苹果WD40基因的共线性分析 | 第36页 |
3.2.5 苹果WD40基因的表达分析 | 第36页 |
3.2.6 数据统计及分析 | 第36页 |
3.3 结果 | 第36-44页 |
3.3.1 苹果WD40基因全基因组鉴定及染色体定位 | 第36-37页 |
3.3.2 苹果WD40蛋白的分类 | 第37-38页 |
3.3.3 苹果与拟南芥WD40基因的进化分析 | 第38-39页 |
3.3.4 苹果WD40基因家族的扩增模式 | 第39-40页 |
3.3.5 苹果与拟南芥中WD40基因的共线性分析 | 第40-41页 |
3.3.6 苹果WD40基因GO注释分析 | 第41-42页 |
3.3.7 苹果WD40基因在不同生长阶段的器官表达模式 | 第42-43页 |
3.3.8 苹果WD40基因对ABA,干旱,低温胁迫响应 | 第43-44页 |
3.4 讨论 | 第44-48页 |
3.4.1 苹果WD40基因家族的鉴定、分类以及进化分析 | 第44-45页 |
3.4.2 苹果WD40基因的扩增 | 第45页 |
3.4.3 苹果WD40基因与拟南芥WD40基因的共线性分析 | 第45页 |
3.4.4 苹果WD40基因GO分析 | 第45-46页 |
3.4.5 苹果WD40基因组织特异性表达以及对ABA,干旱,低温的响应 | 第46-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-57页 |
附录 | 第57-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
作者简介 | 第76页 |