| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 α-亚麻酸 | 第12-15页 |
| 1.1.1 脂肪酸 | 第12-13页 |
| 1.1.2 α-亚麻酸的来源 | 第13-15页 |
| 1.2 α-亚麻酸的功能 | 第15-16页 |
| 1.2.1 预防心血管疾病 | 第15-16页 |
| 1.2.2 降低胆固醇含量 | 第16页 |
| 1.2.3 抗炎作用 | 第16页 |
| 1.2.4 抑制癌症发生 | 第16页 |
| 1.3 植物ALA合成的基本途径 | 第16-19页 |
| 1.3.1 脂肪酸的从头合成 | 第16-17页 |
| 1.3.2 脂肪酸去饱和过程 | 第17-19页 |
| 1.4 ALA合成中的关键酶 | 第19-21页 |
| 1.4.1 脂肪酸去饱和酶的结构与分类 | 第19-20页 |
| 1.4.2 Δ9硬质酰-ACP去饱和酶 | 第20页 |
| 1.4.3 Δ12脂肪酸去饱和酶 | 第20页 |
| 1.4.4 Δ15脂肪酸去饱和酶 | 第20-21页 |
| 1.5 研究的目的、意义和技术路线 | 第21-23页 |
| 1.5.1 研究目的和意义 | 第21-22页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-36页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株及载体质粒 | 第23页 |
| 2.1.3 反应酶及试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.4 常用培养基 | 第24-25页 |
| 2.1.5 主要仪器 | 第25页 |
| 2.1.6 PCR引物和测序 | 第25页 |
| 2.2 方法 | 第25-36页 |
| 2.2.1 序列分析 | 第25页 |
| 2.2.2 RNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.2.3 cDNA第一条链合成 | 第26-27页 |
| 2.2.4 半定量RT-PCR | 第27页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR(qRT-PCR) | 第27-28页 |
| 2.2.6 目的基因扩增 | 第28-29页 |
| 2.2.7 PCR产物回收及纯化 | 第29-30页 |
| 2.2.8 目的片段与pUCm-T载体连接 | 第30-31页 |
| 2.2.9 质粒的提取及纯化 | 第31-32页 |
| 2.2.10 过表达载体的构建 | 第32页 |
| 2.2.11 农杆菌GV3101感受态的制备及转化 | 第32-33页 |
| 2.2.12 拟南芥转化及筛选 | 第33-34页 |
| 2.2.13 拟南芥DNA提取 | 第34-35页 |
| 2.2.14 转基因拟南芥脂肪酸含量测定 | 第35-36页 |
| 第三章 结果与分析 | 第36-54页 |
| 3.1 牡丹中ALA合成相关基因的克隆与序列分析 | 第36-39页 |
| 3.2 同源序列比对和系统进化分析 | 第39-45页 |
| 3.3 牡丹中ALA合成相关基因的表达特性分析 | 第45-46页 |
| 3.3.1 牡丹中ALA合成相关基因在不同组织中的表达水平 | 第45页 |
| 3.3.2 牡丹中ALA合成相关基因在不同种子发育过程中的表达水平 | 第45-46页 |
| 3.4 重组质粒的双酶切检测和PCR鉴定 | 第46-48页 |
| 3.5 ALA合成相关基因过表达对植株脂肪酸含量及组成的影响 | 第48-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 附录 | 第64-69页 |
| 缩写词 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简介 | 第71页 |
