| 摘要 | 第11-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 缩略词 | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-22页 |
| 1.1 琼胶 | 第17-19页 |
| 1.1.1 琼胶的来源 | 第17页 |
| 1.1.2 琼胶的结构和理化性质 | 第17-18页 |
| 1.1.3 琼胶的应用 | 第18-19页 |
| 1.2 琼胶降解酶 | 第19-20页 |
| 1.2.1 琼胶降解酶的来源 | 第19页 |
| 1.2.2 琼胶降解酶的分类 | 第19-20页 |
| 1.3 琼胶降解的作用机制 | 第20页 |
| 1.4 立题依据 | 第20-22页 |
| 第二章 三株海洋新菌的分类鉴定 | 第22-56页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 培养基和溶液 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-29页 |
| 2.2.1 表型特征鉴定 | 第23页 |
| 2.2.2 生理生化特征鉴定 | 第23-24页 |
| 2.2.3 化学特征分析 | 第24-26页 |
| 2.2.4 基于遗传学的鉴定 | 第26-29页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第29-54页 |
| 2.3.1 海洋西南海菌(Seonamhaeicola marinus) B011~T的多相分类鉴定 | 第29-36页 |
| 2.3.2 海洋琼胶降解菌(Agarcorrumpuntur marinu) A100~T的多相分类鉴定 | 第36-47页 |
| 2.3.3 海洋黄海菌(Gilvimarinus marinus)HQSZ~T的多相分类鉴定 | 第47-54页 |
| 2.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第三章 琼胶降解菌A100~T的发酵产酶条件优化 | 第56-74页 |
| 3.1 实验材料 | 第56页 |
| 3.1.1 实验菌株 | 第56页 |
| 3.1.2 主要试剂及仪器 | 第56页 |
| 3.2 实验方法 | 第56-59页 |
| 3.2.1 D-半乳糖标准曲线的绘制 | 第56页 |
| 3.2.2 琼胶降解酶粗酶液的制备 | 第56-57页 |
| 3.2.3 琼胶降解酶活力的测定 | 第57页 |
| 3.2.4 酶活力的计算 | 第57页 |
| 3.2.5 细菌A100~T发酵产琼胶降解酶条件优化 | 第57-59页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第59页 |
| 3.3 结果与分析 | 第59-72页 |
| 3.3.1 D-半乳糖标准曲线 | 第59-60页 |
| 3.3.2 细菌A100~T发酵产琼胶降解酶条件优化 | 第60-67页 |
| 3.3.3 Plackett-Burman Design (PBD)实验 | 第67-69页 |
| 3.3.4 响应面设计实验 | 第69-72页 |
| 3.4 本章小结 | 第72-74页 |
| 第四章 琼胶降解菌A100~Tr的琼胶降解酶基因分析与克隆表达 | 第74-99页 |
| 4.1 琼胶降解菌A100~T的基因组分析 | 第74-77页 |
| 4.1.1 基因组概述 | 第74-75页 |
| 4.1.2 基因功能注释 | 第75-77页 |
| 4.2 实验方法 | 第77-83页 |
| 4.2.1 实验菌株和质粒 | 第77页 |
| 4.2.2 试剂和仪器 | 第77页 |
| 4.2.3 培养基和溶液 | 第77页 |
| 4.2.4 琼胶降解酶的生物信息学分析 | 第77-78页 |
| 4.2.5 琼胶降解酶基因的克隆表达 | 第78-81页 |
| 4.2.6 重组蛋白的表达和纯化 | 第81-83页 |
| 4.3 实验结果 | 第83-97页 |
| 4.3.1 琼胶降解酶基因的生物信息学分析 | 第83-90页 |
| 4.3.2 琼胶降解酶基因的克隆表达 | 第90-97页 |
| 4.4 本章小结 | 第97-99页 |
| 总结与展望 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-107页 |
| 附录Ⅰ | 第107-110页 |
| 附录Ⅱ | 第110-125页 |
| 致谢 | 第125-127页 |
| 资助情况 | 第127-128页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第128-129页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第129页 |
