| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-24页 |
| 1.1 重金属 Cd 污染现状 | 第15-16页 |
| 1.2 重金属 Cd 的危害 | 第16-18页 |
| 1.2.1 Cd 对土壤微生物和土壤动物的毒害 | 第16页 |
| 1.2.2 Cd 对植物的毒害作用 | 第16-18页 |
| 1.2.3 Cd 对人体健康影响 | 第18页 |
| 1.3 重金属耐受性植物促生菌对植物生长与重金属吸收的影响 | 第18-21页 |
| 1.3.1 根际植物促生菌的发现 | 第18-19页 |
| 1.3.2 PGPR 对植物生长促进机理 | 第19-20页 |
| 1.3.3 PGPR 的间接作用途径 | 第20页 |
| 1.3.4 植物促生菌在重金属污染修复中的应用 | 第20-21页 |
| 1.4 基因芯片应用于重金属胁迫植物响应研究的优势及进展 | 第21-22页 |
| 1.5 本研究目的意义与技术路线 | 第22-24页 |
| 1.5.1 本研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第23-24页 |
| 第二章 耐 Cd 植物促生菌的分离筛选与鉴定 | 第24-33页 |
| 2.1 材料和方法 | 第24-29页 |
| 2.1.1 样品采集 | 第24页 |
| 2.1.2 土壤样品基本理化性质分析 | 第24-25页 |
| 2.1.3 耐 Cd 植物促生菌的分离筛选 | 第25页 |
| 2.1.4 耐 Cd 植物促生菌菌体收集及总 DNA 提取 | 第25-27页 |
| 2.1.5 DNA 纯度及浓度的测定 | 第27页 |
| 2.1.6 16S rDNA 的 PCR 扩增 | 第27-28页 |
| 2.1.7 16S rDNA 系统发育分析 | 第28页 |
| 2.1.8 耐 Cd 植物促生菌形态特征和生理生化特征研究 | 第28-29页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第29-32页 |
| 2.2.1 耐 Cd 植物促生菌分离与筛选 | 第29页 |
| 2.2.2 耐 Cd 植物促生菌 D54 形态特征与扫描电镜图 | 第29-30页 |
| 2.2.3 耐 Cd 植物促生菌 D54 生理生化特征 | 第30-32页 |
| 2.2.4 耐 Cd 植物促生菌 D5416S rDNA 序列聚类分析 | 第32页 |
| 2.3 结论 | 第32-33页 |
| 第三章 菌株 D54 的最适生长条件、植物促生特性和重金属耐受性 | 第33-42页 |
| 3.1 材料和方法 | 第33-36页 |
| 3.1.1 菌种和培养基 | 第33页 |
| 3.1.2 耐 Cd 植物促生菌最适生长条件研究 | 第33页 |
| 3.1.3 耐 Cd 植物促生菌生长曲线研究 | 第33-34页 |
| 3.1.4 菌株 D54 产植物生长激素（IAA）定性与定量测定 | 第34页 |
| 3.1.5 菌株 D54 产 ACC 脱氨酶活性实验 | 第34-35页 |
| 3.1.6 菌株 D54 产生嗜铁素测定 | 第35页 |
| 3.1.7 菌株 D54 溶解难溶无机磷酸盐试验 | 第35页 |
| 3.1.8 多种重金属最低抑制浓度（MIC）测定 | 第35-36页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 3.2.1 菌株 D54 最适生长温度 | 第36-37页 |
| 3.2.2 培养基 pH 对菌株 D54 生长的影响 | 第37页 |
| 3.2.3 通气量对菌株 D54 生长的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.4 最佳生长条件下菌株 D54 的生长曲线 | 第38-39页 |
| 3.2.5 菌株 D54 产生植物生长激素（IAA） | 第39页 |
| 3.2.6 菌株 D54 分泌 ACC 脱氨酶及其活性 | 第39页 |
| 3.2.7 菌株 D54 分泌嗜铁素 | 第39页 |
| 3.2.8 菌株 D54 溶解无机磷酸盐 | 第39-40页 |
| 3.2.9 多种重金属对菌株 D54 的 MICs | 第40-41页 |
| 3.3 结论 | 第41-42页 |
| 第四章 菌株 D54 对 Cd 的吸附和活化特性 | 第42-49页 |
| 4.1 材料和方法 | 第42-43页 |
| 4.1.1 耐 Cd 植物促生菌对 Cd 等温吸附研究 | 第42-43页 |
| 4.1.2 菌株 D54 分泌有机酸研究 | 第43页 |
| 4.1.3 耐 Cd 植物促生菌对难溶性 Cd 活化研究 | 第43页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第43-48页 |
| 4.2.1 菌株 D54 对 Cd 的吸附 | 第43-47页 |
| 4.2.2 菌株 D54 有机酸的合成 | 第47页 |
| 4.2.3 菌株 D54 对难溶性 Cd 的活化 | 第47-48页 |
| 4.3 结论 | 第48-49页 |
| 第五章 Cd 耐受基因型番茄材料的筛选 | 第49-62页 |
| 5.1 材料和方法 | 第49-50页 |
| 5.1.1 Cd 耐受基因型番茄平板发芽初筛 | 第49页 |
| 5.1.2 Cd 耐受基因型番茄水培复筛 | 第49-50页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第50-61页 |
| 5.2.1 Cd 耐受基因型番茄平板发芽初筛结果 | 第50-52页 |
| 5.2.2 不同 Cd 浓度胁迫对不同品种番茄芽鲜重影响 | 第52-53页 |
| 5.2.3 Cd 耐受基因基因型番茄水培复筛结果 | 第53-61页 |
| 5.3 结论 | 第61-62页 |
| 第六章 Cd 胁迫下菌株 D54 对番茄生物量、生理生化指标及 Cd 分布的影响 | 第62-77页 |
| 6.1 材料与方法 | 第62-64页 |
| 6.1.1 供试番茄育苗 | 第62页 |
| 6.1.2 样品采集与保存 | 第62-63页 |
| 6.1.3 番茄叶片色素含量测定 | 第63页 |
| 6.1.4 番茄幼苗叶片与根系 SOD，POD，CAT，GR 和 APX 酶活性的测定 | 第63-64页 |
| 6.1.5 番茄根系与叶片 Cd 亚细胞分布 | 第64页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第64-76页 |
| 6.2.1 Cd 胁迫下菌株 D54 对番茄各器官生物量的影响 | 第64-67页 |
| 6.2.2 Cd 胁迫下菌株 D54 对番茄生理生化指标的影响 | 第67-72页 |
| 6.2.3 菌株 D54 对番茄体内 Cd 分布的影响 | 第72-76页 |
| 6.3 小结 | 第76-77页 |
| 第七章 Cd 胁迫下菌株 D54 对番茄幼苗生长及 Cd 吸收转运相关差异表达基因分析与验证 | 第77-93页 |
| 7.1 材料与方法 | 第77-82页 |
| 7.1.1 RNA 提取与纯化 | 第77-78页 |
| 7.1.2 RNA 浓度、纯度和完整性的测定 | 第78页 |
| 7.1.3 DNase 处理提取的 RNA 与反转录 | 第78-79页 |
| 7.1.4 RNA 片段化 | 第79页 |
| 7.1.5 芯片杂交、清洗、染色、扫描 | 第79-80页 |
| 7.1.6 部分差异表达基因的实时荧光定量 PCR（Real time-PCR）验证 | 第80页 |
| 7.1.7 引物的设计与合成 | 第80-81页 |
| 7.1.8 PCR 产物琼脂糖电泳检测 | 第81-82页 |
| 7.1.9 熔解曲线与标准曲线制备 | 第82页 |
| 7.2 结果与讨论 | 第82-92页 |
| 7.2.1 Cd 胁迫下菌株 D54 对番茄根部与叶片基因表达的影响 | 第82-85页 |
| 7.2.2 Cd 胁迫下菌株 D54 影响番茄根部差异表达基因功能分析 | 第85-87页 |
| 7.2.3 Cd 胁迫下菌株 D54 影响番茄叶片差异表达基因功能分析 | 第87-90页 |
| 7.2.4 番茄差异表达基因 Real time-PCR 验证 | 第90-92页 |
| 7.3 结论 | 第92-93页 |
| 第八章 结论及展望 | 第93-95页 |
| 8.1 结论 | 第93-94页 |
| 8.2 展望 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-104页 |
| 发表论文和参加科研情况 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 缩略词表 | 第106-108页 |
| 附表 | 第108-109页 |
