| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-40页 |
| 1 黄瓜绿斑驳花叶病毒研究进展 | 第17-23页 |
| 1.1 CGMMV生物学特性 | 第17-20页 |
| 1.2 CGMMV危害症状 | 第20-21页 |
| 1.3 CGMMV基因组结构及功能 | 第21-22页 |
| 1.4 CGMMV的危害及全基因组序列的研究 | 第22-23页 |
| 2 甘蔗花叶病毒研究进展 | 第23-28页 |
| 2.1 SCMV生物学特性 | 第24-25页 |
| 2.2 SCMV基因组结构及功能 | 第25-28页 |
| 3 植物RNA病毒的检测 | 第28-29页 |
| 3.1 生物学鉴定法 | 第28页 |
| 3.2 电子显微镜观察法 | 第28-29页 |
| 3.3 血清学检测法 | 第29页 |
| 3.4 分子生物学检测法 | 第29页 |
| 4 RNA病毒的遗传变异与进化 | 第29-32页 |
| 4.1 RNA病毒变异机制 | 第29-31页 |
| 4.2 RNA病毒种群结构的系统分析 | 第31-32页 |
| 5 单克隆抗体技术及其在植物病毒学中的应用 | 第32-38页 |
| 5.1 单克隆抗体技术 | 第32-35页 |
| 5.2 单克隆抗体在植物病毒学中的应用 | 第35-38页 |
| 6 本研究的目的及意义 | 第38-40页 |
| 第二章 CGMMV分离物基因组测序及种群遗传结构分析 | 第40-67页 |
| 1 材料与方法 | 第40-47页 |
| 1.1 葫芦科作物、杂草及其种子样品的采集 | 第40页 |
| 1.2 试剂 | 第40页 |
| 1.3 dot-ELISA检测样品中CGMMV | 第40-41页 |
| 1.4 CGMMV的检测及分离物全基因组序列测定 | 第41-46页 |
| 1.5 序列分析 | 第46-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-64页 |
| 2.1 CGMMV在浙江省的发生情况调查 | 第47-50页 |
| 2.2 7个CGMMV浙江分离物全基因组序列测定及同源性分析 | 第50-51页 |
| 2.3 CGMMV种群遗传结构分析 | 第51-64页 |
| 3 讨论 | 第64-67页 |
| 第三章 SCMV云南分离物基因组测序及种群遗传结构分析 | 第67-98页 |
| 1 材料和方法 | 第67-69页 |
| 1.1 病毒样品的采集 | 第67页 |
| 1.2 试剂 | 第67页 |
| 1.3 SCMV云南分离物的检测与全基因组序列测定 | 第67-69页 |
| 1.4 核酸序列分析和重组检测 | 第69页 |
| 2 结果与分析 | 第69-94页 |
| 2.1 RT-PCR方法鉴定云南田间玉米样品感染SCMV | 第69-70页 |
| 2.2 云南田间玉米样品中SCMV的全基因组序列扩增 | 第70页 |
| 2.3 SCMV-YN玉米分离物全基因组序列结构分析 | 第70-73页 |
| 2.4 与其它SCMV分离物同源性比较 | 第73-78页 |
| 2.5 SCMV种群遗传结构分析 | 第78-94页 |
| 3 讨论 | 第94-98页 |
| 第四章 甘蔗花叶病毒单抗的制备及其应用 | 第98-114页 |
| 1 材料和方法 | 第98-106页 |
| 1.1 病毒来源 | 第98页 |
| 1.2 试剂及实验材料 | 第98页 |
| 1.3 病毒粒子的提纯 | 第98-99页 |
| 1.4 单抗的制备、腹水效价测定和抗体类型及亚类鉴定 | 第99-103页 |
| 1.5 Western blot分析单抗的特性 | 第103-105页 |
| 1.6 dot-ELISA方法的建立及其特异性和灵敏度分析 | 第105-106页 |
| 2 结果与分析 | 第106-112页 |
| 2.1 SCMV的提纯及抗原制备 | 第106页 |
| 2.2 杂交瘤细胞的融合、筛选和克隆 | 第106-107页 |
| 2.3 腹水抗体制备、效价测定及抗体亚类鉴定 | 第107页 |
| 2.4 单抗的Western blot分析 | 第107-109页 |
| 2.5 dot-ELISA方法的建立及SCMV单抗的特性分析 | 第109-112页 |
| 3 讨论 | 第112-114页 |
| 全文小结 | 第114-115页 |
| 展望 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-141页 |
| 附录A 常用缓冲液和培养基配方 | 第141-146页 |
| 附录B 常用生化和分子生物学试剂及仪器 | 第146-147页 |
