| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-24页 |
| 1.1 硒概述 | 第12-15页 |
| 1.1.1 硒与营养和健康 | 第12页 |
| 1.1.2 硒蛋白 | 第12-13页 |
| 1.1.3 硒与病毒 | 第13-14页 |
| 1.1.4 硒与癌症预防 | 第14-15页 |
| 1.2 血管生成，健康与癌症 | 第15-22页 |
| 1.2.1 生命中的第一根血管 | 第16页 |
| 1.2.2 血管与疾病和死亡 | 第16-17页 |
| 1.2.3 血管生成在医学中的前景 | 第17-18页 |
| 1.2.4 抗血管生成研究 | 第18-21页 |
| 1.2.5 血管生成研究未来发展趋势 | 第21-22页 |
| 1.3 硒与血管生成 | 第22-23页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第23-24页 |
| 2 材料和方法 | 第24-38页 |
| 2.1 试验材料 | 第24-29页 |
| 2.1.1 试验动物及细胞系 | 第24页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.3 试验主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.4 主要溶液的配制 | 第26-29页 |
| 2.2 试验方法 | 第29-37页 |
| 2.2.1 细胞体外培养 | 第29-30页 |
| 2.2.2 CMT1211小鼠移植瘤模型的建立及实验分组 | 第30-31页 |
| 2.2.3 收集肿瘤样品 | 第31页 |
| 2.2.4 肿瘤组织含硒浓度的测定 | 第31页 |
| 2.2.5 肿瘤组织病理切片制作及HE染色 | 第31-32页 |
| 2.2.6 肿瘤组织微血管密度（MVD）和血管成熟度（VMI）测定 | 第32-33页 |
| 2.2.7 肿瘤组织免疫组化染色 | 第33-35页 |
| 2.2.8 荧光定量 | 第35-36页 |
| 2.2.9 移植瘤组织蛋白的提取及Western Blot分析 | 第36-37页 |
| 2.3 统计学处理 | 第37-38页 |
| 3 实验结果与分析 | 第38-46页 |
| 3.1 细胞培养 | 第38页 |
| 3.2 CMT1211小鼠移植瘤模型的建立及药物处理 | 第38-39页 |
| 3.3 肿瘤抑制率 | 第39页 |
| 3.4 肿瘤组织硒含量 | 第39-40页 |
| 3.5 肿瘤组织病理变化 | 第40-41页 |
| 3.6 肿瘤组织微血管密度（MVD）和血管成熟度（VMI）变化 | 第41-42页 |
| 3.7 肿瘤组织血管生成相关蛋白免疫组化 | 第42-43页 |
| 3.8 肿瘤组织Ang-2，VEGF和PDGF的mRNA表达 | 第43-44页 |
| 3.9 肿瘤组织Ang-2，VEGF和PDGF蛋白表达的Western Blot分析 | 第44-46页 |
| 4 讨论 | 第46-53页 |
| 4.1 乳腺癌小鼠移植瘤模型的建立 | 第46-47页 |
| 4.2 含硒化合物的抗癌作用 | 第47-49页 |
| 4.3 含硒化合物抑制肿瘤血管生成 | 第49-50页 |
| 4.4 血管生成相关因子 | 第50-52页 |
| 4.5 含硒化合物对肿瘤血管生成相关因子的影响 | 第52-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 发表文章 | 第66页 |
