| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 主要缩略词表 | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-29页 |
| 1.1 活性氧ROS的概述 | 第13页 |
| 1.2 ROS的产生与清除 | 第13-17页 |
| 1.2.1 ROS的来源 | 第13-15页 |
| 1.2.2 ROS的清除系统 | 第15-17页 |
| 1.3 ROS与氧化损伤 | 第17-19页 |
| 1.3.1 ROS对脂质的影响 | 第17-18页 |
| 1.3.2 ROS对蛋白质的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.3 ROS对DNA的影响 | 第19页 |
| 1.4 ROS与细胞凋亡 | 第19-20页 |
| 1.5 ROS与疾病 | 第20-23页 |
| 1.5.1 自由基与心血管疾病 | 第21页 |
| 1.5.2 自由基与肿瘤 | 第21-22页 |
| 1.5.3 自由基与男性不育症 | 第22-23页 |
| 1.6 氧化应激中的转录因子 | 第23-26页 |
| 1.6.1 AP-1 | 第23-24页 |
| 1.6.2 HSF1 | 第24-25页 |
| 1.6.3 NF-κB | 第25页 |
| 1.6.4 Nrf2 | 第25-26页 |
| 1.7 中药单体与抗氧化损伤 | 第26-27页 |
| 1.8 论文研究思路 | 第27-29页 |
| 第2章 H_2O_2诱导细胞氧化损伤模型的建立 | 第29-39页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 材料与方法 | 第29-34页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.2 材料与试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-37页 |
| 2.3.1 H_2O_2对细胞形态的影响 | 第34页 |
| 2.3.2 H_2O_2对细胞存活率的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.3 H_2O_2对细胞氧化损伤相关指标的影响 | 第35-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-39页 |
| 第3章 SPATA12基因的抗氧化损伤功能及其作用机制 | 第39-58页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 材料与方法 | 第39-47页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.2 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第41-47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-56页 |
| 3.3.1 H_2O_2对SPATA12表达的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2 SPATA12通过AP-1结合位点应答H_2O_2的刺激 | 第48-53页 |
| 3.3.3 SPATA12能够抑制H_2O_2导致的细胞凋亡 | 第53页 |
| 3.3.4 SPATA12能够降低H_2O_2所致的MDA含量 | 第53-55页 |
| 3.3.5 SPATA12能够抑制细胞内ROS的产生 | 第55-56页 |
| 3.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第4章 抗氧化中药单体对SPATA12基因表达的影响 | 第58-67页 |
| 4.1 前言 | 第58页 |
| 4.2 材料与方法 | 第58-61页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第58-59页 |
| 4.2.2 材料与试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-66页 |
| 4.3.1 抗氧化中药单体对SPATA12表达的影响 | 第61-64页 |
| 4.3.2 AP-1介导白藜芦醇激活SPATA12的转录表达 | 第64-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 附录A 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
