| 1 引言 | 第13-14页 |
| 2 文献综述 | 第14-20页 |
| 2．1 青海湖裸鲤遗传多样性的研究现状 | 第14-16页 |
| 2．1．1 遗传多样性的概念 | 第14页 |
| 2．1．2 群体内遗传多样性的度量 | 第14页 |
| 2．1．3 遗传多样性的检测方法 | 第14-15页 |
| 2．1．4 青海湖裸鲤种群遗传多样性研究现状 | 第15-16页 |
| 2．2 细胞染色体核型分析 | 第16-17页 |
| 2．3 蛋白质和同工酶电泳技术 | 第17-18页 |
| 2．4 mtDNA RFLP分析技术 | 第18-20页 |
| 3 材料与方法 | 第20-28页 |
| 3．1 供试鱼来源 | 第20页 |
| 3．2 样品的采集和处理 | 第20页 |
| 3．2．1 血液样品的采集和处理 | 第20页 |
| 3．2．2 组织样品的采集和处理 | 第20页 |
| 3．3 试剂与溶液 | 第20-21页 |
| 3．3．1 染色体制备用试剂 | 第20页 |
| 3．3．2 电泳试剂 | 第20-21页 |
| 3．3．3 mtDNA分析试剂 | 第21页 |
| 3．4 实验方法 | 第21-26页 |
| 3．4．1 体细胞染色体标本制备 | 第21页 |
| 3．4．2 蛋白及同工酶电泳 | 第21-24页 |
| 3．4．3 mtDNA RFLP分析 | 第24-26页 |
| 3．5 分析方法 | 第26-28页 |
| 3．5．1 青海湖裸鲤体细胞染色体核型分析方法 | 第26-27页 |
| 3．5．2 蛋白及同工酶电泳方法 | 第27页 |
| 3．5．3 mtDNA RFLP电泳结果分析方法 | 第27-28页 |
| 4 结果与分析 | 第28-39页 |
| 4．1 染色体核型分析 | 第28-32页 |
| 4．1．1 二倍体细胞的染色体数目 | 第28-29页 |
| 4．1．2 染色体的相对长度和臂比指数 | 第29-30页 |
| 4．1．3 染色体的核型 | 第30页 |
| 4．1．4 裂腹鱼亚科鱼类核型 | 第30-32页 |
| 4．2 蛋白和同工酶多态性 | 第32-36页 |
| 4．2．1 基因型和基因频率 | 第32页 |
| 4．2．2 蛋白及同工酶多态性分析 | 第32-36页 |
| 4．3 mtDNA片段长度多态性 | 第36-39页 |
| 4．3．1 mtDNA酶切片段长度及酶切类型 | 第36-37页 |
| 4．3．2 青海湖裸鲤群体mtDNA遗传多样性 | 第37-38页 |
| 4．3．3 单倍型间的片段共享度及遗传距离 | 第38-39页 |
| 5 讨论 | 第39-42页 |
| 5．1 青海湖裸鲤细胞染色体 | 第39-40页 |
| 5．1．1 青海湖裸鲤细胞染色体核型特点 | 第39页 |
| 5．1．2 青海湖裸鲤染色体多倍化 | 第39-40页 |
| 5．1．3 青海湖裸鲤的起源及其在演化系统中的地位 | 第40页 |
| 5．2 青海湖裸鲤血液蛋白（同工酶）遗传多态性 | 第40-41页 |
| 5．3 青海湖裸鲤mtDNA遗传多样性 | 第41-42页 |
| 5．3．1 青海湖裸鲤mtDNA多态位点分布及突变的可能来源 | 第41页 |
| 5．3．2 青海湖裸鲤群体mtDNA遗传多样性 | 第41-42页 |
| 6 结论 | 第42-43页 |
| 7 参考文献 | 第43-48页 |
| 附录 | 第48-51页 |
| 致谢 | 第51页 |