| 致谢 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 英文缩略词 | 第12-18页 |
| 1 绪论 | 第18-34页 |
| 1.1 类胡萝卜素的分布和种类 | 第18-19页 |
| 1.2 类胡萝卜素的生物学功能 | 第19-21页 |
| 1.2.1 类胡萝卜素在疾病预防中的功能 | 第19-20页 |
| 1.2.2 类胡萝卜素在植物中的功能 | 第20-21页 |
| 1.3 类胡萝卜素的合成 | 第21-24页 |
| 1.4 类胡萝卜素在质体中的存储 | 第24-26页 |
| 1.5 环境因子对类胡萝卜素的影响 | 第26-27页 |
| 1.5.1 光照对类胡萝卜素的影响 | 第26-27页 |
| 1.5.2 温度对类胡萝卜素的影响 | 第27页 |
| 1.5.3 CO_2对类胡萝卜素的影响 | 第27页 |
| 1.6 信号分子对类胡萝卜素合成的调控 | 第27-32页 |
| 1.6.1 乙烯对类胡萝卜素的调控 | 第28-30页 |
| 1.6.2 茉莉酸对类胡萝卜素的调控 | 第30页 |
| 1.6.3 油菜素甾醇类化合物对类胡萝卜素的调控 | 第30-32页 |
| 1.7 蛋白质组学在果实成熟研究中的应用 | 第32页 |
| 1.8 立题依据及研究目标 | 第32-34页 |
| 2 茉莉酸对番茄果实番茄红素积累的调控 | 第34-51页 |
| 2.1 引言 | 第34-35页 |
| 2.2 材料与方法 | 第35-39页 |
| 2.2.1 实验材料及种植 | 第35页 |
| 2.2.2 番茄果实外源MeJA的处理 | 第35-36页 |
| 2.2.3 类胡萝卜素的分离纯化与分析测定 | 第36-37页 |
| 2.2.4 乙烯产生速率测定 | 第37页 |
| 2.2.5 RNA提取 | 第37-38页 |
| 2.2.6 实时定量RT-PCR检测 | 第38-39页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第39页 |
| 2.3 结果与分析 | 第39-48页 |
| 2.3.1 不同JA水平对番茄果实番茄红素积累的影响 | 第39-42页 |
| 2.3.2 不同JA水平对番茄果实番茄红素合成基因表达的影响 | 第42-44页 |
| 2.3.3 不同JA水平对番茄果实乙烯释放速率的影响 | 第44-45页 |
| 2.3.4 MeJA处理对番茄乙烯不敏感突变体Nr番茄红素积累的影响 | 第45-46页 |
| 2.3.5 MeJA处理对番茄乙烯不敏感突变体Nr番茄红素合成基因表达的影响 | 第46-48页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第48-51页 |
| 3 油莱素甾醇对番茄果实类胡萝卜素积累的调控 | 第51-68页 |
| 3.1 引言 | 第51-52页 |
| 3.2 材料与方法 | 第52-55页 |
| 3.2.1 实验材料及种植 | 第52页 |
| 3.2.2 番茄果实的BR外源处理 | 第52-53页 |
| 3.2.3 类胡萝卜素的分离纯化与分析测定 | 第53页 |
| 3.2.4 质体的透射电镜观察 | 第53页 |
| 3.2.5 RNA的提取 | 第53页 |
| 3.2.6 实时定量PCR检测 | 第53-54页 |
| 3.2.7 叶绿素含量的测定 | 第54-55页 |
| 3.2.8 可溶性固形物含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.9 可溶性糖含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.10 抗坏血酸含量的测定 | 第55页 |
| 3.2.11 数据分析 | 第55页 |
| 3.3 结果与分析 | 第55-66页 |
| 3.3.1 EBR处理对番茄果实类胡萝卜素积累的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.2 EBR处理对番茄乙烯不敏感突变体Nr类胡萝卜素积累的影响 | 第57页 |
| 3.3.3 AtBZR1-1D过表达转基因番茄果实的形态变化 | 第57-59页 |
| 3.3.4 透射电镜下观察到AtBZR1-1D过表达转基因番茄果皮质体的基本特征 | 第59-60页 |
| 3.3.5 异源过表达AtBZR1-1D对番茄果实类胡萝卜素积累的影响 | 第60-62页 |
| 3.3.6 异源过表达AtBZR1-1D对番茄果实类胡萝卜素合成基因表达的影响 | 第62-64页 |
| 3.3.7 异源过表达AtBZR1-1D对番茄果实其他营养品质的影响 | 第64-66页 |
| 3.4 讨论与小结 | 第66-68页 |
| 4 BZR1-1D过表达转基因番茄果实的iTRAQ蛋白组学分析 | 第68-97页 |
| 4.1 引言 | 第68-70页 |
| 4.2 材料与方法 | 第70-73页 |
| 4.2.1 实验材料及种植 | 第70页 |
| 4.2.2 蛋白提取 | 第70页 |
| 4.2.3 蛋白质浓度检测 | 第70页 |
| 4.2.4 蛋白质变性、还原和半胱氨酸阻断 | 第70页 |
| 4.2.5 胰蛋白酶酶解蛋白 | 第70-71页 |
| 4.2.6 iTRAQ试剂标记消化蛋白 | 第71页 |
| 4.2.7 强阳离子交换(SCX) | 第71-72页 |
| 4.2.8 质谱分析 | 第72-73页 |
| 4.2.9 数据分析 | 第73页 |
| 4.2.9.1 质谱数据分析 | 第73页 |
| 4.2.9.2 蛋白质功能分类 | 第73页 |
| 4.3 结果与分析 | 第73-95页 |
| 4.3.1 鉴定信息统计 | 第73-74页 |
| 4.3.2 所有鉴定蛋白质组基因的功能分类 | 第74-76页 |
| 4.3.3 番茄BZR1-1D过表达转基因组特定发育时期果实蛋白组学分析 | 第76-90页 |
| 4.3.3.1 番茄BZR1-1D过表达转基因组未熟期果实蛋白组学分析 | 第78-81页 |
| 4.3.3.2 番茄BZR1-1D过表达转基因组绿熟期果实蛋白组学分析 | 第81-86页 |
| 4.3.3.3 番茄BZR1-1D过表达转基因组破色期果实蛋白组学分析 | 第86-88页 |
| 4.3.3.4 番茄BZR1-1D过表达转基因组红熟期果实蛋白组学分析 | 第88-90页 |
| 4.3.4 番茄果实不同发育时期转变蛋白鉴定结果 | 第90-95页 |
| 4.3.4.1 未熟期向绿熟期转变BZR1-1D转基因组与WT组差异蛋白鉴定 | 第90-92页 |
| 4.3.4.2 破色期向红熟期转变BZR1-1D转基因组与WT组差异蛋白鉴定 | 第92-95页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第95-97页 |
| 5 结论,创新点与展望 | 第97-100页 |
| 5.1 结论 | 第97-98页 |
| 5.2 创新点 | 第98页 |
| 5.3 展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-119页 |
| 个人简介 | 第119-120页 |
