致谢 | 第6-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第14-36页 |
1.1 玉米醇溶蛋白 | 第14-25页 |
1.1.1 玉米醇溶蛋白的分类及基因分布 | 第14-15页 |
1.1.2 玉米醇溶蛋白的表达 | 第15-17页 |
1.1.3 玉米醇溶蛋白的表达调控 | 第17-25页 |
1.2 DNA的甲基化 | 第25-31页 |
1.2.1 DNA甲基化的建立和维持 | 第25页 |
1.2.2 DNA甲基化的分类及功能 | 第25-29页 |
1.2.3 DNA甲基化的检测方法 | 第29-31页 |
1.3 蛋白质组学研究 | 第31-33页 |
1.3.1 双向电泳 | 第31-32页 |
1.3.2 质谱技术 | 第32页 |
1.3.3 同位素标记相对和绝对定量法(iTRAQ) | 第32页 |
1.3.4 植物蛋白质组学的研究 | 第32-33页 |
1.4 本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第33-36页 |
1.4.1 研究目的和意义 | 第33-34页 |
1.4.2 本研究的主要内容 | 第34-36页 |
第二章 玉米Opaque2转录因子结合基因的全基因组分析 | 第36-52页 |
2.1 前言 | 第36-37页 |
2.2 材料与方法 | 第37-38页 |
2.2.1 数据来源 | 第37页 |
2.2.2 O2蛋白所结合的基因预测流程 | 第37-38页 |
2.2.3 染色体分布及GO(Gene Ontology)分析 | 第38页 |
2.2.4 组织表达分析 | 第38页 |
2.3 结果与分析 | 第38-49页 |
2.3.1 启动子中含TCCACGTAGA模体序列基因的鉴定与分析 | 第38-41页 |
2.3.2 启动子中含TCCACGTAGA模体序列基因的GO分析 | 第41-42页 |
2.3.3 启动子中含TCCACGTAGA模体序列基因的组织表达分析 | 第42-44页 |
2.3.4 启动子中含GATGAPyPuTGPu模体序列的基因鉴定与分析 | 第44页 |
2.3.5 启动子中含GATGAPyPuTGPu模体序列基因的GO分析 | 第44-47页 |
2.3.6 含GATGAPyPuTGPu模体序列的基因组织表达分析 | 第47-49页 |
2.4 讨论 | 第49-51页 |
2.5 小结 | 第51-52页 |
第三章 玉米野生型Opaque2及其突变体的蛋白质组学分析 | 第52-72页 |
3.1 前言 | 第52-53页 |
3.2 材料和方法 | 第53-57页 |
3.2.1 材料 | 第53页 |
3.2.2 玉米种子总蛋白的提取及测定 | 第53-54页 |
3.2.3 双向电泳 | 第54-56页 |
3.2.4 质谱鉴定及数据分析 | 第56-57页 |
3.2.5 RT-PCR检测 | 第57页 |
3.3 结果与分析 | 第57-67页 |
3.3.1 种子总蛋白的双向电泳及质谱鉴定 | 第57-63页 |
3.3.2 质谱鉴定结果的GO分析 | 第63-64页 |
3.3.3 差异蛋白点的组织表达分析 | 第64-65页 |
3.3.4 RT-PCR分析 | 第65-67页 |
3.4 讨论 | 第67-69页 |
3.4.1 种子中其他形式的贮藏蛋白 | 第67-68页 |
3.4.2 O2基因的突变改变了种子中酶活性相关蛋白的表达 | 第68-69页 |
3.5 小结 | 第69-72页 |
第四章 玉米19-kDa α-醇溶蛋白基因的DNA甲基化研究 | 第72-90页 |
4.1 前言 | 第72-74页 |
4.2 材料和方法 | 第74-77页 |
4.2.1 材料 | 第74页 |
4.2.2 方法 | 第74-77页 |
4.3 结果与分析 | 第77-86页 |
4.3.1 19-kDa α-醇溶蛋白基因的启动子呈现DNA甲基化多样性 | 第77-78页 |
4.3.2 组织培养能诱导特异位点的DNA甲基化 | 第78-81页 |
4.3.3 基因本体的DNA甲基化分析 | 第81-84页 |
4.3.4 CCG的甲基化 | 第84-86页 |
4.4 讨论 | 第86-88页 |
4.4.1 组织培养改变基因的甲基化 | 第86-87页 |
4.4.2 中等的基因本体甲基化水平更有利于基因的表达 | 第87页 |
4.4.3 mCCG的甲基化受到抑制 | 第87-88页 |
4.5 小结 | 第88-90页 |
第五章 总结与展望 | 第90-92页 |
5.1 总结 | 第90-91页 |
5.2 展望 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-108页 |
附录 | 第108-109页 |