| 中文摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 本论文主要创新点 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-70页 |
| 1.1 纳米材料 | 第16-39页 |
| 1.1.1 纳米材料的概述 | 第16页 |
| 1.1.2 量子点 | 第16-20页 |
| 1.1.2.1 概述 | 第16-17页 |
| 1.1.2.2 量子点的生物应用 | 第17-20页 |
| 1.1.3 磁性材料 | 第20-27页 |
| 1.1.3.1 概述 | 第20页 |
| 1.1.3.2 铁磁性纳米材料的生物应用 | 第20-27页 |
| 1.1.4 石墨烯材料 | 第27-37页 |
| 1.1.4.1 概述 | 第27-28页 |
| 1.1.4.2 石墨烯碳材料的生物传感应用 | 第28-34页 |
| 1.1.4.3 石墨烯碳材料的生物医药应用 | 第34-37页 |
| 1.1.5 聚合物材料 | 第37-39页 |
| 1.1.5.1 概述 | 第37页 |
| 1.1.5.2 温敏聚合物材料 | 第37-38页 |
| 1.1.5.3 pH敏感型聚合物材料 | 第38-39页 |
| 1.2 非编码RNA-siRNA和miRNA | 第39-52页 |
| 1.2.1 siRNA和miRNA的概述 | 第39-41页 |
| 1.2.2 siRNA/DNA的作用及其转染 | 第41-45页 |
| 1.2.2.1 基因载体的转染机理 | 第41-42页 |
| 1.2.2.2 非病毒载体 | 第42-45页 |
| 1.2.3 miRNA的作用及其检测 | 第45-52页 |
| 1.2.3.1 miRNA的功能 | 第45-46页 |
| 1.2.3.2 传统的检测方法 | 第46-49页 |
| 1.2.3.3 新miRNA检测技术 | 第49-52页 |
| 1.3 本论文的选题思路和主要工作 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-70页 |
| 第二章 基于叶酸受体靶向的pH敏感的聚多巴胺空心纳米胶囊用于细胞成像和药物递送 | 第70-86页 |
| 2.1 前言 | 第70-71页 |
| 2.2 实验部分 | 第71-74页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第71-72页 |
| 2.2.2 FA-PEI-PDAC的制备 | 第72页 |
| 2.2.3 药物装载与释放 | 第72页 |
| 2.2.4 细胞培养和毒性试验 | 第72-73页 |
| 2.2.5 细胞内吞过程的研究 | 第73页 |
| 2.2.6 基于FA的竞争抑制实验 | 第73页 |
| 2.2.7 细胞内活性氧物种分析 | 第73-74页 |
| 2.2.8 仪器 | 第74页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第74-81页 |
| 2.3.1 PDAC和PDAC-PEI-PDAC的表征 | 第74-76页 |
| 2.3.2 FA-PEI-PDAC的装载和释放行为 | 第76-77页 |
| 2.3.3 体外细胞毒性实验 | 第77-80页 |
| 2.3.4 细胞内活性氧的测定(ROS) | 第80页 |
| 2.3.5 叶酸介导的药物传递系统的机制 | 第80-81页 |
| 2.4 结论 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 第三章 高度分散的PEG化石墨烯/金复合材料作为基因传递载体和潜在的癌症治疗剂 | 第86-102页 |
| 3.1 前言 | 第86-87页 |
| 3.2 实验部分 | 第87-90页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第87页 |
| 3.2.2 PEI-RGO/Au复合物的合成 | 第87-88页 |
| 3.2.3 mPEG-PGA(PPGA)的合成 | 第88页 |
| 3.2.4 PPGA/siRNA复合物的制备及凝胶电泳阻滞实验 | 第88页 |
| 3.2.5 细胞培养及细胞毒性测试 | 第88页 |
| 3.2.6 细胞的转染以及PPGA/siRNA的内吞 | 第88-89页 |
| 3.2.7 红细胞溶解及聚集实验 | 第89页 |
| 3.2.8 Western blot实验 | 第89页 |
| 3.2.9 仪器 | 第89-90页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第90-98页 |
| 3.3.1 PPGA的制备与表征 | 第90-93页 |
| 3.3.2 体外细胞毒性和血液相容性 | 第93-94页 |
| 3.3.3 PPGA/siRNA复合物的表征 | 第94-95页 |
| 3.3.4 PPGA/siRNA的细胞摄取 | 第95-97页 |
| 3.3.5 PPGA的光热效应 | 第97-98页 |
| 3.4 结论 | 第98页 |
| 参考文献 | 第98-102页 |
| 第四章 双金属钯/铂/石墨烯复合金电极促进的氧化还原循环反应用于细胞裂解液内microRNA的电化学检测 | 第102-116页 |
| 4.1 前言 | 第102-103页 |
| 4.2 实验步骤 | 第103-106页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第103-104页 |
| 4.2.2 丝网印刷金电极(SPGE)的修饰 | 第104页 |
| 4.2.3 Fe_3O_4@PDA的制备 | 第104页 |
| 4.2.4 Fe_3O_4@PDA-DNA1的制备 | 第104页 |
| 4.2.5 RNA的杂交反应和电化学测量 | 第104-105页 |
| 4.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第105页 |
| 4.2.7 细胞培养和细胞裂解 | 第105页 |
| 4.2.8 通过qRT-PCR的let-7b检测 | 第105-106页 |
| 4.2.9 仪器 | 第106页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第106-113页 |
| 4.3.1 捕获探针Fe_3O_4@PDA—DNA 1的制备与表征 | 第106-108页 |
| 4.3.2 探针与目标RNA的杂交反应 | 第108页 |
| 4.3.3 电化学信号的检测 | 第108-110页 |
| 4.3.4 条件实验和氧化还原循环反应 | 第110-111页 |
| 4.3.5 生物传感器的灵敏度和选择性研究 | 第111-112页 |
| 4.3.6 实际样品的测定 | 第112-113页 |
| 4.4 结论 | 第113页 |
| 参考文献 | 第113-116页 |
| 第五章 基于金属离子功能化磷酸钛纳米粒子的MicroRNA超灵敏电化学检测 | 第116-130页 |
| 5.1 前言 | 第116-117页 |
| 5.2 实验步骤 | 第117-120页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第117-118页 |
| 5.2.2 亲和素修饰的Cd~(2+)功能化TiP探针的制备(TiP-Cd~(2+)/SA) | 第118页 |
| 5.2.3 传感器的修饰 | 第118-119页 |
| 5.2.4 RNA杂交和电化学检测 | 第119页 |
| 5.2.5 细胞培养和细胞裂解 | 第119页 |
| 5.2.6 仪器 | 第119-120页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第120-126页 |
| 5.3.1 信号探针TiP-Cd~(2+)/SA的表征 | 第120-121页 |
| 5.3.2 传感器界面构建表征 | 第121-122页 |
| 5.3.3 探针与目标RNA的杂交反应 | 第122-123页 |
| 5.3.4 实验条件的优化 | 第123-124页 |
| 5.3.5 RNA的电化学检测 | 第124-125页 |
| 5.3.6 RNA特异性及实际样品检测 | 第125-126页 |
| 5.4 结论 | 第126页 |
| 参考文献 | 第126-130页 |
| 第六章 N-乙酰葡糖胺修饰的CdSeTe量子点作为荧光探针用于蛋白质Hsp70的特异性识别 | 第130-141页 |
| 6.1 前言 | 第130-131页 |
| 6.2 实验部分 | 第131-133页 |
| 6.2.1 实验试剂 | 第131页 |
| 6.2.2 半胱氨酸包裹CdSeTe量子点的合成 | 第131-132页 |
| 6.2.3 QDs-Con A-GlcNAc复合物的合成 | 第132页 |
| 6.2.4 荧光标记HeLa细胞以及共聚焦荧光成像 | 第132页 |
| 6.2.5 仪器 | 第132-133页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第133-138页 |
| 6.3.1 QD-Con A-GlcNAc复合物的表征 | 第133-135页 |
| 6.3.2 Hsp70蛋白过表达细胞的免疫荧光标记 | 第135-138页 |
| 6.4 结论 | 第138页 |
| 参考文献 | 第138-141页 |
| 结论与展望 | 第141-142页 |
| 附录 | 第142-145页 |
| 致谢 | 第145-146页 |
