超嗜热菌Calditerricola satsumensis FAFU012的发酵优化及其发酵菌剂的制备
摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
1 引言 | 第11-22页 |
1.1 超嗜热菌 | 第11-14页 |
1.1.1 超嗜热菌概念 | 第11-12页 |
1.1.2 超嗜热菌研究概况及其应用 | 第12-14页 |
1.2 Calditerricola的研究 | 第14-15页 |
1.3 微生物的发酵工艺 | 第15-19页 |
1.3.1 发酵培养基的优化 | 第15-17页 |
1.3.2 发酵培养条件的优化 | 第17-18页 |
1.3.3 发酵优化实验设计 | 第18-19页 |
1.4 微生物菌剂的制备 | 第19页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
1.6 本研究技术路线 | 第21-22页 |
2 材料与方法 | 第22-35页 |
2.1 实验材料 | 第22-25页 |
2.1.1 供试菌株 | 第22页 |
2.1.2 培养基 | 第22页 |
2.1.3 实验试剂与引物 | 第22-24页 |
2.1.4 实验仪器与数据库 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-35页 |
2.2.1 超嗜热菌的富集与分离 | 第25-26页 |
2.2.2 革兰氏染色 | 第26-27页 |
2.2.3 形态观察 | 第27页 |
2.2.4 电镜观察 | 第27页 |
2.2.5 DNA的提取 | 第27-28页 |
2.2.6 PCR扩增 | 第28-29页 |
2.2.7 菌株分子生物学鉴定 | 第29页 |
2.2.8 种子液和污泥浸提液的制备 | 第29页 |
2.2.9 生长曲线的测定 | 第29-30页 |
2.2.10 活菌数的测定 | 第30页 |
2.2.11 发酵培养基的优化 | 第30-31页 |
2.2.12 发酵条件的优化 | 第31-32页 |
2.2.13 20L小试发酵生产 | 第32页 |
2.2.14 发酵菌剂制备 | 第32页 |
2.2.15 菌剂有效活菌数的测定 | 第32-33页 |
2.2.16 激光共聚焦显微成像技术 | 第33-35页 |
3 结果与分析 | 第35-63页 |
3.1 菌种鉴定 | 第35-38页 |
3.1.1 菌落形态特征 | 第35-36页 |
3.1.2 菌株分子生物学鉴定 | 第36-38页 |
3.2 生长曲线 | 第38-39页 |
3.3 单因素实验设计 | 第39-44页 |
3.3.1 不同碳源的影响 | 第39-40页 |
3.3.2 不同氮源的影响 | 第40-41页 |
3.3.3 不同无机盐的影响 | 第41-44页 |
3.4 Plackett-Burman实验设计 | 第44-47页 |
3.5 最陡爬坡实验设计 | 第47-48页 |
3.6 响应面分析(RSM)优化 | 第48-55页 |
3.6.1 实验设计与结果 | 第48-49页 |
3.6.2 二次回归拟合及方差分析 | 第49-50页 |
3.6.3 各影响因素之间的交互作用 | 第50-54页 |
3.6.4 回归模型的验证 | 第54-55页 |
3.7 发酵条件优化 | 第55-58页 |
3.7.1 发酵温度 | 第55-56页 |
3.7.2 初始pH值 | 第56页 |
3.7.3 摇床转速 | 第56-57页 |
3.7.4 接种量 | 第57-58页 |
3.8 20L小试发酵生产 | 第58-60页 |
3.8.1 简易超嗜热发酵装置 | 第58-59页 |
3.8.2 小试发酵生产 | 第59-60页 |
3.9 发酵菌剂制备 | 第60-63页 |
4 结论、讨论与创新点 | 第63-67页 |
4.1 结论 | 第63-64页 |
4.2 讨论 | 第64-66页 |
4.3 创新点 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-75页 |
攻读硕士期间的研究成果 | 第75-76页 |
致谢 | 第76页 |