| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 虾青素概述 | 第9-13页 |
| 1.1.1 虾青素的理化性质 | 第9-10页 |
| 1.1.2 虾青素的生物学作用 | 第10-12页 |
| 1.1.3 虾青素的主要来源 | 第12-13页 |
| 1.2 大肠杆菌细胞工厂概述 | 第13-16页 |
| 1.2.1 大肠杆菌的生物特性 | 第13页 |
| 1.2.2 利用大肠杆菌生产生化产品 | 第13-15页 |
| 1.2.3 利用大肠杆菌生产虾青素 | 第15-16页 |
| 1.3 蓝细菌细胞工厂概述 | 第16-21页 |
| 1.3.1 蓝细菌及集胞藻PCC 6803 | 第16-17页 |
| 1.3.2 蓝细菌细胞工厂的优势和研究现状 | 第17-19页 |
| 1.3.3 在蓝细菌中合成类胡萝卜素 | 第19-21页 |
| 1.4 本文的主要内容及研究意义 | 第21-22页 |
| 第二章 在大肠杆菌中合成虾青素 | 第22-49页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-26页 |
| 2.1.1 实验菌株与质粒 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 培养基、溶液与试剂 | 第24-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-38页 |
| 2.2.1 质粒pAC-BETA和pAC-ZEAX的保存与转化 | 第26页 |
| 2.2.2 质粒pAC-BETA和pAC-ZEAX的提取 | 第26-27页 |
| 2.2.3 鱼腥藻Anabaena sp. PCC 7120 基因组DNA提取 | 第27-28页 |
| 2.2.4 PCR构建目标基因片段 | 第28-31页 |
| 2.2.5 质粒构建 | 第31-33页 |
| 2.2.6 细胞感受态制备 | 第33页 |
| 2.2.7 菌株构建 | 第33-35页 |
| 2.2.8 RT-PCR检测基因表达 | 第35-37页 |
| 2.2.9 虾青素的提取和检测 | 第37-38页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第38-48页 |
| 2.3.1 crtW线性打靶片段和pET-30a-PZ质粒的构建 | 第38-42页 |
| 2.3.2 菌株构建 | 第42-44页 |
| 2.3.3 RT-PCR检测目标基因转录 | 第44-45页 |
| 2.3.4 LC-MS检测虾青素 | 第45-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第三章 蓝细菌中虾青素的生物合成及优化 | 第49-68页 |
| 3.1 实验材料 | 第49-53页 |
| 3.1.1 实验菌株与质粒 | 第49-50页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第50页 |
| 3.1.3 培养基、溶液与试剂 | 第50-53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-61页 |
| 3.2.1 提取质粒 | 第53页 |
| 3.2.2 鱼腥藻Anabaena sp. PCC 7120 基因组DNA提取 | 第53-54页 |
| 3.2.3 PCR构建目标基因片段 | 第54-56页 |
| 3.2.4 菌株构建 | 第56-57页 |
| 3.2.5 RT-PCR检测基因表达 | 第57-59页 |
| 3.2.6 虾青素的提取和检测 | 第59-60页 |
| 3.2.7 虾青素的表达对集胞藻PCC 6803 的影响 | 第60-61页 |
| 3.3 实验结果 | 第61-67页 |
| 3.3.1 PCR扩增crtW目的基因与pJA2质粒骨架 | 第61页 |
| 3.3.2 构建pJA2-W质粒 | 第61-62页 |
| 3.3.3 菌株构建 | 第62-63页 |
| 3.3.4 RT-PCR检测基因表达 | 第63-64页 |
| 3.3.5 虾青素的检测和定量 | 第64-66页 |
| 3.3.6 虾青素的积累对集胞藻 PCC 6803 的影响 | 第66-67页 |
| 3.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第四章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 4.1 本文的工作总结 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
