| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 肿瘤营养环境和能量代谢特点 | 第9-12页 |
| 1.1.1 肿瘤营养环境 | 第9页 |
| 1.1.2 肿瘤细胞能量代谢特点及意义 | 第9-10页 |
| 1.1.3 基于肿瘤营养环境与能量代谢的治疗手段 | 第10-12页 |
| 1.2 抗肿瘤血管生成治疗 | 第12-14页 |
| 1.2.1 基于肿瘤营养环境与能量代谢的治疗手段 | 第12-13页 |
| 1.2.2 代表性药物 | 第13页 |
| 1.2.3 弊端 | 第13-14页 |
| 1.2.4 解决办法 | 第14页 |
| 1.3 肿瘤细胞自噬 | 第14-20页 |
| 1.3.1 自噬定义、分类和模式 | 第14-16页 |
| 1.3.2 肿瘤细胞发生自噬的原因 | 第16页 |
| 1.3.3 自噬的影响因素 | 第16页 |
| 1.3.4 自噬与肿瘤能量代谢 | 第16页 |
| 1.3.5 自噬与肿瘤的发生、发展 | 第16-19页 |
| 1.3.6 自噬与肿瘤的转移 | 第19页 |
| 1.3.7 自噬与肿瘤治疗 | 第19-20页 |
| 1.4 本论文的选题意义与研究内容 | 第20-21页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 不同血清浓度培养液对肿瘤细胞增殖和形态的影响 | 第21-35页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第21页 |
| 2.1.2 主要试剂与耗材 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 细胞复苏 | 第23页 |
| 2.2.2 细胞传代培养与扩增 | 第23-24页 |
| 2.2.3 细胞计数 | 第24页 |
| 2.2.4 细胞冻存 | 第24页 |
| 2.2.5 肿瘤细胞增殖能力检测 | 第24页 |
| 2.2.6 脐带来源间充质干细胞UC-MSCs的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.7 脐带来源间充质干细胞UC-MSCs的免疫表型 | 第25页 |
| 2.2.8 脐带来源间充质干细胞UC-MSCs的分化潜能 | 第25页 |
| 2.2.9 吉姆萨染色 | 第25-26页 |
| 2.2.10 统计学分析 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-34页 |
| 2.3.1 不同血清浓度对肿瘤细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.2 高浓度血清对PC3M细胞形态的影响及其与时间的关系 | 第27-29页 |
| 2.3.3 不同血清浓度对不同肿瘤细胞形态的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.4 UC-MSCs的免疫表型和分化能力 | 第30-32页 |
| 2.3.5 不同浓度血清对正常细胞形态的影响 | 第32页 |
| 2.3.6 吉姆萨染色观察细胞形态的改变 | 第32-34页 |
| 2.4 小结 | 第34-35页 |
| 第三章 高血清浓度对前列腺癌细胞成瘤性和肿瘤转移的影响 | 第35-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第35-38页 |
| 3.1.1 细胞系与实验动物 | 第35页 |
| 3.1.2 主要试剂与耗材 | 第35-36页 |
| 3.1.3 主要溶液的配制 | 第36-37页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第37-38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 癌细胞克隆形成能力检测 | 第38页 |
| 3.2.2 PC3M细胞裸鼠体内成瘤能力检测 | 第38页 |
| 3.2.3 组织切片H&E染色 | 第38-39页 |
| 3.2.4 癌细胞粘附能力检测 | 第39页 |
| 3.2.5 PC3M细胞迁移能力检测 | 第39页 |
| 3.2.6 免疫印迹分析 | 第39-41页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-48页 |
| 3.3.1 高浓度血清对癌细胞克隆形成能力的影响 | 第41-43页 |
| 3.3.2 高浓度血清对PC3M细胞体内成瘤能力的影响 | 第43-45页 |
| 3.3.3 高浓度血清对癌细胞粘附能力的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.4 高浓度血清对PC3M细胞迁移能力的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.5 高浓度血清对PC3M细胞转移相关蛋白表达的影响 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 血清浓度影响前列腺癌细胞形态和成瘤性的机制初探 | 第49-57页 |
| 4.1 实验材料 | 第49-51页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第49页 |
| 4.1.2 主要试剂与耗材 | 第49-50页 |
| 4.1.3 主要溶液的配制 | 第50页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第50-51页 |
| 4.2 实验方法 | 第51-52页 |
| 4.2.1 细胞油红染色 | 第51页 |
| 4.2.2 annexin V-APC/PI双标检测前列腺癌细胞凋亡 | 第51页 |
| 4.2.3 透射电镜 | 第51页 |
| 4.2.4 免疫印迹分析 | 第51-52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-56页 |
| 4.3.1 高浓度血清对PC3M细胞脂肪变性程度的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.2 高浓度血清对PC3M细胞凋亡的影响 | 第53页 |
| 4.3.3 利用透射电镜初步判断细胞空泡为自噬小体 | 第53-54页 |
| 4.3.4 高血清浓度激活PC3M细胞自噬信号通路 | 第54-56页 |
| 4.4 小结 | 第56-57页 |
| 第五章 结论与展望 | 第57-58页 |
| 5.1 结论 | 第57页 |
| 5.2 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
