中文摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
文献综述 H6亚型禽流感病毒研究进展 | 第11-21页 |
第一章 鸭源H6N6亚型AIV分离鉴定及遗传进化分析 | 第21-53页 |
1 材料 | 第21-22页 |
1.1 主要动物 | 第21页 |
1.2 主要试剂 | 第21-22页 |
1.3 主要仪器 | 第22页 |
2 方法 | 第22-28页 |
2.1 病毒分离 | 第22页 |
2.2 血清学鉴定 | 第22-23页 |
2.3 生物学特性测定 | 第23页 |
2.4 引物设计 | 第23-24页 |
2.5 全基因组RT-PCR的扩增 | 第24-26页 |
2.6 分离株全基因克隆及重组质粒的鉴定 | 第26-28页 |
2.7 分离株H6N6亚型AIV全基因组核苷酸序列测定及序列分析 | 第28页 |
3 结果 | 第28-50页 |
3.1 病毒的血清学鉴定结果 | 第28-29页 |
3.2 病毒的RT-PCR鉴定结果 | 第29-31页 |
3.3 病毒生物学特性的测定 | 第31-32页 |
3.4 病毒全基因组测序结果及同源性比对结果 | 第32-33页 |
3.5 编码氨基酸序列分析比较结果 | 第33-41页 |
3.6 核苷酸序列同源性比对结果 | 第41-46页 |
3.7 遗传进化分析 | 第46-50页 |
4 讨论 | 第50-53页 |
4.1 关于AIV分离鉴定方法 | 第50-51页 |
4.2 关于家禽在AIV传播中的作用 | 第51页 |
4.3 H6亚型AIV的遗传变异情况 | 第51-53页 |
第二章 鸭源H6N6亚型AIV对鸭的致病性研究 | 第53-65页 |
1 材料 | 第53-54页 |
1.1 主要毒株 | 第53页 |
1.2 主要动物 | 第53页 |
1.3 主要试剂 | 第53-54页 |
1.4 主要仪器 | 第54页 |
2 方法 | 第54-58页 |
2.1 鸭的致病性试验 | 第54-55页 |
2.2 H6亚型AIV M基因荧光定量检测方法的建立 | 第55-56页 |
2.3 鸭喉头、泄殖腔和组织器官中的病毒含量检测 | 第56-57页 |
2.4 H6亚型AIV感染鸭组织脏器的病理观察 | 第57-58页 |
3 结果 | 第58-62页 |
3.1 H6N6亚型AIV M基因重组质粒的构建与鉴定 | 第58-59页 |
3.2 H6亚型AIV M基因实时荧光定量RT-PCR检测方法建立 | 第59-61页 |
3.3 鸭感染H6N6亚型AIV后排毒及在组织器官病毒分布情况 | 第61页 |
3.4 鸭感染H6N6亚型AIV后病理组织学观察 | 第61-62页 |
4 讨论 | 第62-65页 |
4.1 关于H6N6亚型AIV的荧光定量RT-PCR检测方法的讨论 | 第62-63页 |
4.2 关于H6亚型AIV的致病性的研究 | 第63-65页 |
第三章 H6N6亚型AIV对鸭免疫器官中细胞因子转录水平的影响 | 第65-82页 |
1 材料 | 第65-66页 |
1.1 组织病料 | 第65-66页 |
1.2 主要试剂 | 第66页 |
1.3 主要仪器 | 第66页 |
2 方法 | 第66-68页 |
2.1 鸭IL-2、IL-10、IFN-α 质粒标准品的构建 | 第66-67页 |
2.2 鸭IL-2、IL-10、IFN-α 实时荧光定量RT-PCR检测方法的建立 | 第67-68页 |
2.3 H6N6亚型AIV感染鸭后免疫器官中IL-2、IL-10、IFN-α转录动态 | 第68页 |
3 结果 | 第68-79页 |
3.1 鸭IL-2、IL-10、IFN-α RT-PCR扩增结果 | 第68-73页 |
3.2 鸭IL-2、IL-10、IFN-α的测定结果 | 第73-74页 |
3.3 鸭IL-2、IL-10、IFN-α实时荧光定量RT-PCR检测方法的建立 | 第74-77页 |
3.4 H6N6亚型AIV感染后鸭免疫器官中IL-2、IL-10、IFN-α转录动态 | 第77-79页 |
4 讨论 | 第79-82页 |
4.1 关于细胞因子mRNA转录水平的相对荧光定量RT-PCR检测 | 第79页 |
4.2 关于细胞因子在抗流感病毒感染中的作用 | 第79-80页 |
4.3 关于禽流感病毒感染后对宿主细胞因子转录水平的影响 | 第80-82页 |
全文结论 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-92页 |
附录一、发表文章 | 第92-93页 |
附录二、各种培养基、溶液及试剂的配制 | 第93-94页 |
附图 | 第94-95页 |