dSTORM超分辨成像技术的实现及其应用
摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
第一章 绪论 | 第8-24页 |
1.1 传统荧光显微技术 | 第8-12页 |
1.1.1 荧光基础及荧光显微镜 | 第8-10页 |
1.1.2 激光共聚焦显微成像技术(LSCM) | 第10-11页 |
1.1.3 全内反射显微成像技术(TIRF) | 第11-12页 |
1.2 荧光显微技术的分辨率 | 第12-13页 |
1.3 超分辨显微成像技术 | 第13-21页 |
1.3.1 调制点扩散函数(PSF)的成像技术 | 第14-16页 |
1.3.2 单分子定位显微成像技术 | 第16-21页 |
1.4 P小体 | 第21-22页 |
1.5 本文研究内容 | 第22-24页 |
第二章 基于单分子定位方法的超分辨成像系统的建立 | 第24-42页 |
2.1 引言 | 第24-25页 |
2.2 实验试剂和仪器 | 第25-26页 |
2.3 超分辨成像系统的硬件搭建及软件设计 | 第26-30页 |
2.4 dSTORM成像技术的实现 | 第30-38页 |
2.4.1 材料准备及样品处理 | 第30-33页 |
2.4.2 dSTORM的成像过程 | 第33-34页 |
2.4.3 dSTORM的数据处理过程 | 第34页 |
2.4.4 实验结果与讨论 | 第34-38页 |
2.5 PALM成像技术的探索 | 第38-40页 |
2.5.1 样品处理及实验过程 | 第38页 |
2.5.2 PALM成像结果分析 | 第38-40页 |
2.6 本章小结 | 第40-42页 |
第三章 dSTORM成像条件及参数的优化 | 第42-52页 |
3.1 引言 | 第42-43页 |
3.2 实验材料与方法 | 第43-44页 |
3.2.1 细胞培养 | 第43页 |
3.2.2 细胞固定和染色 | 第43页 |
3.2.3 不同浓度成像缓冲液的配制 | 第43-44页 |
3.2.4 dSTORM成像实验及数据处理 | 第44页 |
3.2.5 验证图像采集帧数对成像结果影响的实验 | 第44页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第44-50页 |
3.3.1 不同浓度成像缓冲液对成像结果影响 | 第44-46页 |
3.3.2 图像采集帧数对成像结果的影响 | 第46页 |
3.3.3 肌动蛋白微丝的超分辨成像 | 第46-48页 |
3.3.4 实验中遇到的问题及解决方法 | 第48-50页 |
3.4 本章小结 | 第50-52页 |
第四章 dSTORM技术在P小体成像中的应用 | 第52-60页 |
4.1 引言 | 第52页 |
4.2 实验材料 | 第52-54页 |
4.3 实验方法 | 第54-55页 |
4.3.1 细胞培养 | 第54页 |
4.3.2 细胞转染 | 第54页 |
4.3.3 免疫荧光染色 | 第54-55页 |
4.3.4 成像实验 | 第55页 |
4.4 实验结果与讨论 | 第55-58页 |
4.4.1 P小体中Dcpla蛋白的荧光图 | 第55-56页 |
4.4.2 P小体与外源miRNA21的共定位 | 第56-57页 |
4.4.3 P小体的dSTORM成像结果 | 第57-58页 |
4.5 本章小结 | 第58-60页 |
第五章 总结与展望 | 第60-62页 |
5.1 工作总结 | 第60-61页 |
5.2 论文不足和展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-68页 |
致谢 | 第68-70页 |
附录:硕士期间发表的论文 | 第70页 |