中文摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-10页 |
缩略词表 | 第11-12页 |
1 前言 | 第12-41页 |
1.1 植物代谢组学研究概况 | 第12-16页 |
1.1.1 植物代谢组学的研究内容 | 第12页 |
1.1.2 代谢组学技术与方法的发展 | 第12-16页 |
1.2 类黄酮与酚胺的结构与功能 | 第16-20页 |
1.2.1 类黄酮的结构及其鉴定 | 第16-18页 |
1.2.2 酚胺的结构及其鉴定 | 第18-20页 |
1.3 类黄酮与酚胺的生物合成途径 | 第20-27页 |
1.3.1 类黄酮的生物合成途径 | 第20-23页 |
1.3.2 植物多胺的生物合成 | 第23-25页 |
1.3.3 植物BAHD家族酰基转移酶及其与酚胺的合成 | 第25-27页 |
1.4 类黄酮与酚胺在植物中的积累及其生物学功能 | 第27-33页 |
1.4.1 类黄酮在植物中的分布 | 第27-29页 |
1.4.2 酚胺在植物中的积累模式 | 第29-30页 |
1.4.3 类黄酮的生物学功能 | 第30-31页 |
1.4.4 酚胺的生物学功能 | 第31-33页 |
1.5 代谢物在植物中的自然变异 | 第33-36页 |
1.5.1 水稻亚洲栽培稻的遗传变异 | 第33-35页 |
1.5.2 种质资源在作物遗传育种中的重要作用 | 第35-36页 |
1.5.3 植物代谢物的遗传变异 | 第36页 |
1.6 植物代谢组学全基因组关联分析 | 第36-40页 |
1.6.1 基因型分型与全基因组关联分析 | 第36-38页 |
1.6.2 植物代谢组学全基因组关联分析 | 第38-40页 |
1.7 本课题研究目的与意义 | 第40-41页 |
2 材料与方法 | 第41-46页 |
2.1 植物材料来源 | 第41-42页 |
2.2 标样试剂 | 第42-43页 |
2.3 样品准备与提取 | 第43页 |
2.4 类黄酮与酚胺的液相色谱串联质谱分析 | 第43页 |
2.5 统计分析 | 第43-44页 |
2.6 水稻种质的基因型分型 | 第44页 |
2.7 全基因组关联分析 | 第44页 |
2.8 双位点遗传互作分析 | 第44页 |
2.9 载体构建与转化 | 第44-45页 |
2.10 基因表达量分析 | 第45-46页 |
3 结果与分析 | 第46-77页 |
3.1 水稻中类黄酮的时空积累与自然变异 | 第46-60页 |
3.1.1 水稻中类黄酮物质检测与鉴定 | 第46-48页 |
3.1.2 类黄酮在水稻中的组织特异性分布 | 第48-51页 |
3.1.3 类黄酮在水稻不同发育阶段组织中的时空积累模式 | 第51-53页 |
3.1.4 类黄酮在水稻亚种籼稻与粳稻中的差异 | 第53-55页 |
3.1.5 水稻剑叶类黄酮积累的自然变异 | 第55-57页 |
3.1.6 水稻黄酮自然变异遗传机理的分析 | 第57-60页 |
3.2 水稻酚胺的时空特异积累及羟基肉桂酰亚精胺自然变异的遗传基础 | 第60-77页 |
3.2.1 水稻中酚胺的检测与鉴定 | 第60-61页 |
3.2.2 酚胺在水稻中的组织特异积累 | 第61-63页 |
3.2.3 酚胺在水稻中的时空积累 | 第63-65页 |
3.2.4 水稻营养期叶片中酚胺积累的自然变异 | 第65-66页 |
3.2.5 羟基肉桂酰亚精胺的全基因组关联分析 | 第66-69页 |
3.2.6 羟基肉桂酰亚精胺自然变异的遗传机理 | 第69-71页 |
3.2.7 羟基肉桂酰亚精胺合成候选基因的注释与验证 | 第71-77页 |
4 讨论 | 第77-82页 |
4.1 水稻类黄酮的结构与鉴定 | 第77页 |
4.2 水稻类黄酮的积累与功能的特异性 | 第77-78页 |
4.3 水稻类黄酮的自然变异以用于代谢标记物 | 第78-79页 |
4.4 类黄酮自然变异的遗传机理 | 第79页 |
4.5 水稻酚胺的分布及其与类黄酮的差异 | 第79-80页 |
4.6 酚胺酰基化在植物中的差异 | 第80页 |
4.7 水稻酚胺合成酰基转移酶的自然变异 | 第80-82页 |
5 参考文献 | 第82-97页 |
附录 | 第97-103页 |
附录Ⅰ:研究中使用的水稻品种信息 | 第97-101页 |
附录Ⅱ:部分实验的详细操作程序 | 第101-102页 |
附录Ⅲ:作者简介 | 第102-103页 |
致谢 | 第103-105页 |