首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医传染病学论文--病毒病论文

猪细小病毒诱导ST细胞凋亡信号转导通路的研究

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-9页
前言第13-14页
第一章 猪细小病毒的研究进展第14-19页
    1.1 PPV的病原学第14-16页
        1.1.1 PPV的形态及理化特性第14-15页
        1.1.2 PPV的体外培养特性第15页
        1.1.3 PPV的组织嗜性及致病性第15-16页
    1.2 PPV的流行病学第16-17页
        1.2.1 PPV的发病史及流行现状第16页
        1.2.2 PPV的传染源、传播途径及易感动物第16-17页
    1.3 PPV的致病机理第17页
    1.4 PPV的临床症状及病理变化第17-18页
    1.5 PPV的诊断与防治第18-19页
第二章 动物病毒诱导细胞凋亡的研究第19-24页
    2.1 细胞凋亡的概述第19-20页
        2.1.1 细胞凋亡和坏死的区别第19页
        2.1.2 细胞凋亡的生理意义第19页
        2.1.3 细胞凋亡的检测方法第19-20页
    2.2 细胞凋亡相关的调控因子第20-22页
        2.2.1 Caspase家族第20-21页
        2.2.2 Bcl-2 家族第21页
        2.2.3 ROS第21-22页
    2.3 细胞凋亡的信号通路第22-23页
        2.3.1 线粒体通路第22页
        2.3.2 死亡受体通路第22页
        2.3.3 内质网通路第22-23页
    2.4 病毒感染与细胞凋亡的联系第23页
    2.5 本研究的目的与意义第23-24页
第三章 猪细小病毒诱导ST细胞凋亡第24-31页
    3.1 材料第24-25页
        3.1.1 毒株和细胞株第24页
        3.1.2 主要试剂第24页
        3.1.3 主要仪器第24-25页
        3.1.4 试验所用溶液的配制第25页
    3.2 方法第25-27页
        3.2.1 细胞培养第25-26页
        3.2.2 病毒的增殖第26页
        3.2.3 MTT 法检测细胞活性第26页
        3.2.4 AO/EB荧光染色第26页
        3.2.5 DNA片断化分析第26-27页
        3.2.6 流式细胞术检测细胞凋亡率第27页
        3.2.7 统计学分析第27页
    3.3 结果与分析第27-29页
        3.3.1 PPV感染对ST细胞活性影响的检测第27-28页
        3.3.2 PPV诱导ST细胞凋亡的形态学变化第28页
        3.3.3 DNA片段化分析第28-29页
        3.3.4 流式细胞术检测PPV感染对ST细胞凋亡率的影响第29页
    3.4 讨论第29-30页
    3.5 小结第30-31页
第四章 猪细小病毒诱导ST细胞凋亡的信号通路第31-39页
    4.1 材料第31-32页
        4.1.1 主要试剂第31页
        4.1.2 主要仪器第31页
        4.1.3 试验所用溶液的配制第31-32页
    4.2 方法第32-33页
        4.2.1 Caspase活性检测第32页
        4.2.2 线粒体膜电位的测定第32页
        4.2.3 Western blot检测凋亡相关因子的变化第32-33页
        4.2.4 统计学分析第33页
    4.3 结果与分析第33-37页
        4.3.1 PPV感染对ST细胞内Caspase活性的影响第33-34页
        4.3.2 PPV感染ST细胞对Fas与FasL表达的影响第34-35页
        4.3.3 PPV感染促进Caspase-3 的底物PARP的切割第35页
        4.3.4 PPV感染ST细胞对Bax与Bcl-2 蛋白表达水平的影响第35页
        4.3.5 PPV感染对ST细胞对线粒体膜电位变化的影响第35-36页
        4.3.6 PPV感染ST细胞对Bax与Cyt c转位的影响第36-37页
    4.4 讨论第37-38页
    4.5 小结第38-39页
第五章 PPV诱导ROS的活化第39-47页
    5.1 材料第39页
        5.1.1 主要试剂第39页
        5.1.2 试验所用溶液的配制第39页
        5.1.3 主要仪器第39页
    5.2 方法第39-40页
        5.2.1 ROS水平检测第39-40页
        5.2.2 抑制试验第40页
        5.2.3 线粒体膜电位及Western blot检测第40页
        5.2.4 Caspase-3 活性及细胞凋亡率检测第40页
        5.2.5 统计学分析第40页
    5.3 结果与分析第40-45页
        5.3.1 PPV感染引起ROS积累第40-41页
        5.3.2 ROS调控线粒体膜电位的变化第41-42页
        5.3.3 ROS清除剂对细胞凋亡调控蛋白的影响第42-43页
        5.3.4 ROS清除剂对细胞内Caspase-3 活性的影响第43-44页
        5.3.5 ROS清除剂对细胞凋亡率的影响第44-45页
    5.4 讨论第45页
    5.5 小结第45-47页
结论与创新点第47-48页
参考文献第48-53页
缩略词第53-54页
致谢第54-55页
作者简介第55页

论文共55页,点击 下载论文
上一篇:2008年美国金融危机中资产证券化产品风险研究
下一篇:我国医疗保障制度引入市场机制改革研究