摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
符号说明 | 第15-17页 |
第一章 绪论 | 第17-29页 |
1.1 基因治疗 | 第17-18页 |
1.2 基因载体的分类 | 第18-19页 |
1.2.1 病毒性基因载体 | 第18页 |
1.2.2 非病毒性基因载体 | 第18-19页 |
1.3 质粒运输过程的障碍 | 第19-21页 |
1.3.1 血液相容性 | 第19-20页 |
1.3.2 血管通透性 | 第20-21页 |
1.3.3 溶酶体内的释放 | 第21页 |
1.4 环糊精主客体自组装 | 第21-24页 |
1.4.1 含β-CD的主客体自组装 | 第22-23页 |
1.4.2 主客体自组装纳米载体在基因治疗中应用 | 第23-24页 |
1.5 诊疗一体化的多功能基因载体 | 第24-26页 |
1.5.1 成像诊断技术 | 第24页 |
1.5.2 光热治疗 | 第24-26页 |
1.6 本课题的意义 | 第26-29页 |
1.6.1 可剪切的基因载体 | 第27页 |
1.6.2 多功能的纳米基因载体 | 第27-29页 |
第二章 基于可剪切聚轮烷构建准梳状阳鼻子基因载体 | 第29-53页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验药品和仪器 | 第30-32页 |
2.2.1 实验药品 | 第30-31页 |
2.2.2 实验仪器 | 第31-32页 |
2.3 实验方法 | 第32-35页 |
2.3.1 合成引发剂Br-SS-PEG-SS-Br | 第32页 |
2.3.2 通过第一步ATRP制备可剪切聚轮烷(SS-PR) | 第32页 |
2.3.3 通过第二步ATRP制备SS-PR-pDMs | 第32-33页 |
2.3.4 聚合物的表征 | 第33页 |
2.3.5 聚合物/pDNA复合物的表征 | 第33-34页 |
2.3.6 细胞毒性测试 | 第34页 |
2.3.7 体外转染测试 | 第34页 |
2.3.8 细胞内吞效率测试 | 第34-35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-50页 |
2.4.1 可剪切基因载体的构建 | 第35-36页 |
2.4.2 聚合物结构的表征 | 第36-39页 |
2.4.3 聚合物/pDNA的表征 | 第39-42页 |
2.4.4 SS-PR和SS-PR-pDMs的可剪切性 | 第42-44页 |
2.4.5 细胞毒性分析 | 第44-46页 |
2.4.6 基因转染效率分析 | 第46-48页 |
2.4.7 细胞内吞效率分析 | 第48-50页 |
2.5 本章小结 | 第50-53页 |
第三章 基于有机无机复合纳米颗粒构建多功能基因载体 | 第53-77页 |
3.1 引言 | 第53-54页 |
3.2 实验药品和仪器 | 第54-55页 |
3.3 实验方法 | 第55-59页 |
3.3.1 纤维素-金纳米颗粒基因载体的制备 | 第55-56页 |
3.3.2 有机无机复合材料的表征 | 第56-57页 |
3.3.2.1 CNC-Au NR-PGEA的表征 | 第56-57页 |
3.3.2.2 CNC-Au NR-PGEA/pDNA的表征 | 第57页 |
3.3.3 细胞毒性测试 | 第57页 |
3.3.4 体外转染测试 | 第57页 |
3.3.5 细胞内吞效率测试 | 第57页 |
3.3.6 CNC-Au NR-PGEA的光声成像 | 第57-58页 |
3.3.7 CNC-Au NR-PGEA的光热性能 | 第58页 |
3.3.8 体外及体内的抗癌实验 | 第58-59页 |
3.4 结果与讨论 | 第59-76页 |
3.4.1 以纤维素-金纳米颗粒基体的多功能基因载体的制备 | 第59-60页 |
3.4.2 CNC-Au NR-PGEA基因载体的表征 | 第60-65页 |
3.4.3 细胞毒性分析 | 第65-66页 |
3.4.4 基因转染效率分析 | 第66-69页 |
3.4.5 细胞内吞效率分析 | 第69-70页 |
3.4.6 CNC-Au NR-PGEA光声成像 | 第70-71页 |
3.4.7 CNC-Au NR-PGEA的光热性能 | 第71-74页 |
3.4.8 光热及基因治疗效果 | 第74-76页 |
3.5 本章小结 | 第76-77页 |
第四章 总结与展望 | 第77-79页 |
参考文献 | 第79-87页 |
致谢 | 第87-89页 |
研究成果及发表的学术论文 | 第89-91页 |
导师简介 | 第91页 |
作者简介 | 第91-92页 |
附件 | 第92-93页 |