| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-11页 |
| 文献综述 | 第11-21页 |
| 第一章 MIRNAS的基本生物学特征 | 第11-15页 |
| ·MIRNAs的发现 | 第11页 |
| ·MIRNAs的形成 | 第11-13页 |
| ·参与MIRNAs形成的关键因子 | 第13-15页 |
| 第二章 MIRNAS与哺乳动物骨骼肌发育 | 第15-21页 |
| ·肌肉特异性的MIRNAs | 第15-16页 |
| ·MIRNAs与肌纤维类型 | 第16-17页 |
| ·MIRNAs与肌肉疾病 | 第17-18页 |
| ·MIR-143的研究进展 | 第18-21页 |
| ·miR-143与肿瘤发生 | 第19页 |
| ·miR-143与脂肪形成和肌肉发育 | 第19-21页 |
| 实验研究 | 第21-55页 |
| 第三章 猪比目鱼肌和趾长伸肌的SOLEXA测序 | 第21-28页 |
| ·材料方法 | 第21-22页 |
| ·样品准备和RNA提取 | 第21页 |
| ·样品RNA的Solexa测序 | 第21页 |
| ·小RNA序列分析 | 第21-22页 |
| ·结果 | 第22-26页 |
| ·RNA质量分析 | 第22页 |
| ·小RNA的序列读数与基因组定位 | 第22-25页 |
| ·小RNA的分类注释 | 第25-26页 |
| ·讨论 | 第26-28页 |
| 第四章 猪比目鱼肌和趾长伸肌相关MIRNAS的鉴定和特征 | 第28-39页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·候选新pre-miRNA的预测 | 第28-29页 |
| ·miRNAs的碱基编辑 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-37页 |
| ·保守pre-miRNA二级结构预测及其序列聚类 | 第29-32页 |
| ·猪保守miRNAs序列变异和“种子”区序列的碱基编辑 | 第32-35页 |
| ·新候选miRNAs的鉴定 | 第35-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第五章 猪比目鱼肌和趾长伸肌相关MIRNAS的表达分析 | 第39-45页 |
| ·材料与方法 | 第39-40页 |
| ·差异表达的miRNAs的定量 | 第39页 |
| ·miRNAs差异表达分析 | 第39-40页 |
| ·结果 | 第40-43页 |
| ·猪肌肉组织中已知miRNAs的表达分析 | 第40页 |
| ·SL和EDL高丰度表达的miRNAs | 第40-41页 |
| ·差异表达miRNAs的茎环定量RT-PCR | 第41-42页 |
| ·SL和EDL中miRNA*的表达模式 | 第42-43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| 第六章 MIR-143-3P的表达模式 | 第45-48页 |
| ·材料与方法 | 第45-46页 |
| ·样品准备和总RNA提取 | 第45页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第45页 |
| ·统计分析 | 第45-46页 |
| ·结果 | 第46-47页 |
| ·miR-143-3p在小鼠不同组织的表达分析 | 第46页 |
| ·miR-143-3p在快慢肌中的表达分析 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| 第七章 MIR-143-3P促进C2C12成肌细胞分化 | 第48-55页 |
| ·材料 | 第48页 |
| ·方法 | 第48-49页 |
| ·C2C12成肌细胞的培养 | 第48页 |
| ·miR-143-3p的模拟物和特异性抑制剂的转染 | 第48页 |
| ·免疫荧光 | 第48-49页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR分析 | 第49页 |
| ·Western blotting | 第49页 |
| ·统计分析 | 第49页 |
| ·结果 | 第49-53页 |
| ·miR-143-3p在成肌分化过程中的表达变化 | 第49-50页 |
| ·miR-143-3p模拟物和特异性抑制剂的转染及效率检测 | 第50-51页 |
| ·miR-143-3p对C2C12成肌细胞分化的影响 | 第51-52页 |
| ·miR-143-3p对肌球蛋白重链(MyHCs)表达的影响 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 创新点 | 第56-57页 |
| 进一步的研究内容 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简介 | 第66页 |
