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菟丝子属近似种的超微结构与分子鉴定技术的研究

摘要第1-10页
Abstract第10-11页
1 前言第11-15页
   ·菟丝子鉴定方法的研究进展第11-13页
     ·形态学鉴定第11页
     ·细胞学鉴定第11-12页
     ·生物化学鉴定第12-13页
       ·化学分类标记第12页
       ·同工酶第12-13页
     ·分子水平鉴定第13页
       ·制备探针和标记探针第13页
       ·PCR技术第13页
   ·菟丝子鉴定方法的研究展望第13-14页
   ·选题意义和研究思路第14-15页
2 材料与方法第15-23页
   ·材料第15-18页
     ·供试材料第15-16页
       ·扫描电镜的供试材料第15-16页
       ·DNA提取的供试材料第16页
       ·ILPs分子标记的供试材料第16页
       ·RAPD反应体系优化的材料第16页
     ·供试试剂第16-17页
     ·试剂配置第17页
     ·仪器设备第17-18页
     ·供试引物第18页
   ·方法第18-23页
     ·形态特征的观察方法第18页
     ·扫描电镜操作方法第18-19页
       ·仪器设备第18页
       ·操作方法第18-19页
     ·DNA微量提取方法的研究第19页
       ·CTAB(十六烷基二乙基溴化铵)方法第19页
       ·SDS(十二烷基硫酸钠)方法第19页
       ·Moller方法第19页
       ·TaKaRa DNA提取试剂盒子提取方法第19页
     ·DNA的纯度与质量浓度检测方法——分光光度法第19页
     ·琼脂糖凝胶电泳检测第19-20页
     ·ILPs标记的获得和ILPs-PCR第20-21页
     ·非变性聚丙烯酰胺(Native-PAGE)凝胶电泳第21页
       ·Native-PAGE凝胶的灌制第21页
       ·PCR扩增产物的电泳第21页
       ·银染法第21页
       ·结果统计第21页
     ·聚类分析第21页
     ·菟丝子RAPD反应体系的建立和优化第21-23页
       ·RAPD体系各组分的浓度优化试验第21-22页
       ·RAPD扩增程序的优化第22-23页
3 结果与分析第23-39页
   ·菟丝子属种子的外部形态特征第23-25页
   ·菟丝子属种子的超微结构特征第25-29页
     ·日本菟丝子、单柱菟丝子与啤酒花菟丝子的超微结构分类第28页
     ·其他10种菟丝子的超微结构特征的分类第28-29页
       ·南方菟丝子和田野菟丝子的超微结构分类第28-29页
       ·三叶草菟丝子、五角菟丝子、亚麻菟丝子的超微结构分类第29页
   ·DNA提取方法的比较第29-32页
     ·DNA纯度的检测结果第29-30页
     ·DNA质量浓度检测第30-31页
     ·DNA提取率检测第31-32页
   ·凝胶电泳的检测第32-33页
     ·四种DNA提取方法的凝胶电泳的检测第32页
     ·ILPs分子标记所用的DNA凝胶电泳检测第32-33页
   ·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测第33-35页
   ·聚类分析以及分子系统树第35页
   ·RAPD反应体系的优化第35-39页
     ·DNA浓度对RAPD-PCR扩增的影响第35-36页
     ·引物浓度对RAPD-PCR扩增的影响第36页
     ·dNTP对RAPD-PCR扩增的影响第36-37页
     ·Taq酶浓度对RAPD-PCR扩增的影响第37页
     ·MgCl_2浓度对RAPD-PCR扩增的影响第37-38页
     ·扩增程序的优化结果第38-39页
4 讨论第39-42页
   ·菟丝子属种子的超微结构特征第39页
   ·应用超微结构特征鉴定的优缺点第39-40页
   ·DNA微量提取方法的研究第40页
   ·ILPs分子标记第40-41页
     ·分子标记鉴定的优点第40-41页
     ·ILPs分子鉴定的凝胶电泳检测结果第41页
     ·电泳条件第41页
   ·RAPD优化的作用第41-42页
参考文献第42-46页
附Ⅰ: TaKaRa DNA提取试剂盒提取DNA操作步骤第46-47页
附Ⅱ: 种脐的扫描电镜观察图第47-49页
附Ⅲ: 14种菟丝子种子的超微结构图第49-55页
附Ⅳ: 超微结构特征的分种检索表第55-56页
在学期间发表的论文第56-57页
致谢第57页

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