摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
1 前言 | 第11-15页 |
·菟丝子鉴定方法的研究进展 | 第11-13页 |
·形态学鉴定 | 第11页 |
·细胞学鉴定 | 第11-12页 |
·生物化学鉴定 | 第12-13页 |
·化学分类标记 | 第12页 |
·同工酶 | 第12-13页 |
·分子水平鉴定 | 第13页 |
·制备探针和标记探针 | 第13页 |
·PCR技术 | 第13页 |
·菟丝子鉴定方法的研究展望 | 第13-14页 |
·选题意义和研究思路 | 第14-15页 |
2 材料与方法 | 第15-23页 |
·材料 | 第15-18页 |
·供试材料 | 第15-16页 |
·扫描电镜的供试材料 | 第15-16页 |
·DNA提取的供试材料 | 第16页 |
·ILPs分子标记的供试材料 | 第16页 |
·RAPD反应体系优化的材料 | 第16页 |
·供试试剂 | 第16-17页 |
·试剂配置 | 第17页 |
·仪器设备 | 第17-18页 |
·供试引物 | 第18页 |
·方法 | 第18-23页 |
·形态特征的观察方法 | 第18页 |
·扫描电镜操作方法 | 第18-19页 |
·仪器设备 | 第18页 |
·操作方法 | 第18-19页 |
·DNA微量提取方法的研究 | 第19页 |
·CTAB(十六烷基二乙基溴化铵)方法 | 第19页 |
·SDS(十二烷基硫酸钠)方法 | 第19页 |
·Moller方法 | 第19页 |
·TaKaRa DNA提取试剂盒子提取方法 | 第19页 |
·DNA的纯度与质量浓度检测方法——分光光度法 | 第19页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第19-20页 |
·ILPs标记的获得和ILPs-PCR | 第20-21页 |
·非变性聚丙烯酰胺(Native-PAGE)凝胶电泳 | 第21页 |
·Native-PAGE凝胶的灌制 | 第21页 |
·PCR扩增产物的电泳 | 第21页 |
·银染法 | 第21页 |
·结果统计 | 第21页 |
·聚类分析 | 第21页 |
·菟丝子RAPD反应体系的建立和优化 | 第21-23页 |
·RAPD体系各组分的浓度优化试验 | 第21-22页 |
·RAPD扩增程序的优化 | 第22-23页 |
3 结果与分析 | 第23-39页 |
·菟丝子属种子的外部形态特征 | 第23-25页 |
·菟丝子属种子的超微结构特征 | 第25-29页 |
·日本菟丝子、单柱菟丝子与啤酒花菟丝子的超微结构分类 | 第28页 |
·其他10种菟丝子的超微结构特征的分类 | 第28-29页 |
·南方菟丝子和田野菟丝子的超微结构分类 | 第28-29页 |
·三叶草菟丝子、五角菟丝子、亚麻菟丝子的超微结构分类 | 第29页 |
·DNA提取方法的比较 | 第29-32页 |
·DNA纯度的检测结果 | 第29-30页 |
·DNA质量浓度检测 | 第30-31页 |
·DNA提取率检测 | 第31-32页 |
·凝胶电泳的检测 | 第32-33页 |
·四种DNA提取方法的凝胶电泳的检测 | 第32页 |
·ILPs分子标记所用的DNA凝胶电泳检测 | 第32-33页 |
·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第33-35页 |
·聚类分析以及分子系统树 | 第35页 |
·RAPD反应体系的优化 | 第35-39页 |
·DNA浓度对RAPD-PCR扩增的影响 | 第35-36页 |
·引物浓度对RAPD-PCR扩增的影响 | 第36页 |
·dNTP对RAPD-PCR扩增的影响 | 第36-37页 |
·Taq酶浓度对RAPD-PCR扩增的影响 | 第37页 |
·MgCl_2浓度对RAPD-PCR扩增的影响 | 第37-38页 |
·扩增程序的优化结果 | 第38-39页 |
4 讨论 | 第39-42页 |
·菟丝子属种子的超微结构特征 | 第39页 |
·应用超微结构特征鉴定的优缺点 | 第39-40页 |
·DNA微量提取方法的研究 | 第40页 |
·ILPs分子标记 | 第40-41页 |
·分子标记鉴定的优点 | 第40-41页 |
·ILPs分子鉴定的凝胶电泳检测结果 | 第41页 |
·电泳条件 | 第41页 |
·RAPD优化的作用 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-46页 |
附Ⅰ: TaKaRa DNA提取试剂盒提取DNA操作步骤 | 第46-47页 |
附Ⅱ: 种脐的扫描电镜观察图 | 第47-49页 |
附Ⅲ: 14种菟丝子种子的超微结构图 | 第49-55页 |
附Ⅳ: 超微结构特征的分种检索表 | 第55-56页 |
在学期间发表的论文 | 第56-57页 |
致谢 | 第57页 |