| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 第一部分 文献综述 猪戊型肝炎病毒的研究进展 | 第13-30页 |
| 摘要 | 第13页 |
| Abstract | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 1. 戊型肝炎病毒 | 第15-20页 |
| ·病原学 | 第15-16页 |
| ·分子生物学 | 第16-20页 |
| 2. 猪场中戊型肝炎病毒的存在情况 | 第20-21页 |
| 3. 与猪接触的人群感染情况 | 第21-23页 |
| 4. 猪戊型肝炎病毒诊断表位的筛选 | 第23-24页 |
| 5. 猪戊型肝炎病毒的诊断 | 第24-27页 |
| 6. 存在的问题及展望 | 第27-30页 |
| 第二部分 研究论文 猪戊型肝炎病毒表位的筛选及间接ELISA 方法的建立 | 第30-58页 |
| 摘要 | 第30-31页 |
| Abstract | 第31-33页 |
| 前言 | 第33-35页 |
| 材料和方法 | 第35-43页 |
| 1 材料 | 第35-37页 |
| ·主要试剂与器材 | 第35-36页 |
| ·血清标本 | 第36-37页 |
| ·主要溶液配制 | 第37页 |
| 2 方法 | 第37-43页 |
| ·抗原区筛选 | 第37-39页 |
| ·HEV ORF 编码蛋白的亲水性分析和二级结构预测 | 第39页 |
| ·合成多肽及纯度鉴定 | 第39-40页 |
| ·间接ELISA 的操作步骤 | 第40页 |
| ·间接ELISA 的结果判定 | 第40页 |
| ·抗原多肽的筛选 | 第40-41页 |
| ·间接ELISA 最佳反应条件的确定 | 第41-42页 |
| ·特异性试验 | 第42页 |
| ·重复性试验 | 第42页 |
| ·敏感性试验 | 第42-43页 |
| ·稳定剂的应用 | 第43页 |
| ·本试剂盒与国内商业试剂盒检测比较 | 第43页 |
| ·猪HEV 间接ELISA 诊断试剂盒的应用 | 第43页 |
| ·整套试剂盒稳定性观察 | 第43页 |
| 结果与分析 | 第43-58页 |
| 1. HEV ORF 编码蛋白的亲水性分析和二级结构预测 | 第43-45页 |
| 2. 合成多肽及纯度鉴定 | 第45-46页 |
| 3. 抗原的筛选 | 第46-48页 |
| 4 间接ELISA 反应条件的优化 | 第48-53页 |
| ·最佳封闭液的确定 | 第48-49页 |
| ·最佳抗原工作浓度和血清稀释度的确定 | 第49-50页 |
| ·酶标抗体最适浓度的确定 | 第50页 |
| ·最适血清工作时间的确定 | 第50-51页 |
| ·酶标抗体最适作用时间的确定 | 第51页 |
| ·底物作用时间的确定 | 第51-52页 |
| ·包被用水的选择 | 第52页 |
| ·最佳洗涤液的确定 | 第52-53页 |
| 5 特异性实验结果 | 第53页 |
| 6 重复性试验结果 | 第53-54页 |
| ·批内重复性试验 | 第53页 |
| ·批间重复性试验 | 第53-54页 |
| 7 敏感性试验结果 | 第54-55页 |
| 8 稳定剂的应用 | 第55-56页 |
| ·封闭液中稳定剂的应用 | 第55-56页 |
| ·酶结合物稀释液中稳定剂的应用 | 第56页 |
| 9 本试剂盒与国内商业试剂盒检测比较 | 第56-57页 |
| 10 猪HEV 间接ELISA 诊断试剂盒的应用 | 第57-58页 |
| 11 整套试剂盒稳定性观察 | 第58页 |
| 讨论 | 第58-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 附图 | 第62-68页 |
| 参考文献 | 第68-77页 |
| 附录：中英文对照 | 第77-79页 |
| 研究生期间论文及研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
