| 中文摘要 | 第17-19页 |
| ABSTRACT | 第19-21页 |
| 第一章 综述 | 第22-32页 |
| 1 硒概述 | 第22页 |
| 2 硒的存在形式 | 第22-23页 |
| 2.1 无机硒 | 第22页 |
| 2.2 有机硒 | 第22-23页 |
| 3 纳米硒的作用 | 第23-26页 |
| 3.1 纳米硒的非生物性质 | 第23-24页 |
| 3.1.1 光催化作用 | 第23-24页 |
| 3.1.2 传感器 | 第24页 |
| 3.1.3 废水处理 | 第24页 |
| 3.2 纳米硒的生物学活性 | 第24-26页 |
| 3.2.1 纳米硒的安全性 | 第25页 |
| 3.2.2 纳米硒的抗氧化活性 | 第25页 |
| 3.2.3 纳米硒的免疫调节作用 | 第25页 |
| 3.2.4 纳米硒对细胞和生物机体损伤的保护作用 | 第25-26页 |
| 3.2.5 纳米硒的抗肿瘤作用 | 第26页 |
| 3.2.6 其它作用 | 第26页 |
| 4 纳米硒的生物合成 | 第26-28页 |
| 4.1 植物合成 | 第26-27页 |
| 4.2 真菌合成 | 第27页 |
| 4.3 细菌合成 | 第27-28页 |
| 5 光合细菌 | 第28-29页 |
| 5.1 光合细菌的分类及特性 | 第28页 |
| 5.2 光合细菌还原硒的研究现状 | 第28-29页 |
| 6 本学位论文的研究目的和意义与研究内容 | 第29-32页 |
| 6.1 研究目的和意义 | 第29页 |
| 6.2 研究内容 | 第29-32页 |
| 第二章 沼泽红假单胞菌还原亚硒酸钠为纳米硒的研究 | 第32-44页 |
| 1 材料与方法 | 第33-35页 |
| 1.1 实验材料 | 第33页 |
| 1.1.1 菌种 | 第33页 |
| 1.1.2 培养基 | 第33页 |
| 1.1.3 主要仪器和试剂 | 第33页 |
| 1.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 1.2.1 沼泽红假单胞菌的培养 | 第33页 |
| 1.2.2 亚硒酸钠对沼泽红假单胞菌生长的影响 | 第33-34页 |
| 1.2.3 沼泽红假单胞菌还原亚硒酸钠的研究 | 第34页 |
| 1.2.4 透射电镜(TEM)和能谱分析(EDX)对还原产物的表征 | 第34页 |
| 1.2.5 扫描电镜(SEM)对沼泽红假单胞菌菌体形态的观察 | 第34页 |
| 1.2.6 亚硒酸钠对沼泽红假单胞菌菌体超微结构的影响 | 第34页 |
| 1.2.7 统计分析 | 第34-35页 |
| 2 结果 | 第35-39页 |
| 2.1 亚硒酸钠对沼泽红假单胞菌生长的影响 | 第35-36页 |
| 2.2 沼泽红假单胞菌对亚硒酸钠的还原动力学研究 | 第36-37页 |
| 2.3 沼泽红假单胞菌还原亚硒酸钠产生红色纳米硒 | 第37-38页 |
| 2.4 沼泽红假单胞菌还原亚硒酸钠产物的TEM和EDX分析 | 第38-39页 |
| 2.5 沼泽红假单胞菌菌体超微结构观察 | 第39页 |
| 3 讨论 | 第39-41页 |
| 4 结论 | 第41-44页 |
| 第三章 沼泽红假单胞菌源纳米硒的生物利用度研究 | 第44-56页 |
| 1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 1.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 1.1.1 菌种 | 第45页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第45页 |
| 1.1.3 昆明小鼠 | 第45页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第45页 |
| 1.1.5 主要试剂 | 第45-46页 |
| 1.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 1.2.1 沼泽红假单胞菌和沼泽红假单胞菌源纳米硒的制备 | 第46页 |
| 1.2.2 HepG2细胞培养及实验设计 | 第46-47页 |
| 1.2.3 动物饲养及分组 | 第47页 |
| 1.2.4 硒含量的测定 | 第47页 |
| 1.2.5 含硒酶活力的测定 | 第47-48页 |
| 1.2.6 总蛋白含量测定 | 第48页 |
| 1.2.7 统计学分析 | 第48页 |
| 2 结果 | 第48-51页 |
| 2.1 沼泽红假单胞菌源纳米硒对HepG2细胞中含硒酶活力的影响 | 第48-49页 |
| 2.2 沼泽红假单胞菌源纳米硒对小鼠生长情况的影响 | 第49页 |
| 2.3 沼泽红假单胞菌源纳米硒对小鼠组织硒蓄积的影响 | 第49-50页 |
| 2.4 沼泽红假单胞菌源纳米硒对小鼠GSH-Px活性的影响 | 第50-51页 |
| 2.5 沼泽红假单胞菌源纳米硒对小鼠TrxR活性的影响 | 第51页 |
| 3 讨论 | 第51-53页 |
| 4 结论 | 第53-56页 |
| 第四章 生物源纳米硒对肝癌HepG2细胞抑制活性的研究 | 第56-74页 |
| 1 材料和方法 | 第57-61页 |
| 1.1 实验材料 | 第57-58页 |
| 1.1.1 菌种 | 第57页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第57页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第57-58页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第58页 |
| 1.1.5 主要溶液配制 | 第58页 |
| 1.2 实验方法 | 第58-61页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第58页 |
| 1.2.2 生物源纳米硒的制备 | 第58-59页 |
| 1.2.3 生物源纳米硒的表征 | 第59页 |
| 1.2.4 细胞活性的检测 | 第59-60页 |
| 1.2.5 DAPI染色观察 | 第60页 |
| 1.2.6 AO/EB染色观察 | 第60页 |
| 1.2.7 HepG2细胞超微结构观察 | 第60页 |
| 1.2.8 细胞凋亡检测 | 第60页 |
| 1.2.9 Caspase-3/8/9活性测定 | 第60页 |
| 1.2.10 总蛋白含量测定 | 第60页 |
| 1.2.11 统计学分析 | 第60-61页 |
| 2 结果 | 第61-69页 |
| 2.1 生物源纳米硒的分离纯化 | 第61页 |
| 2.2 生物源纳米硒的形貌特征 | 第61-63页 |
| 2.3 生物源纳米硒对人肝癌HepG2细胞增殖的影响 | 第63-64页 |
| 2.4 生物源纳米硒诱导细胞凋亡的形态学观察 | 第64-66页 |
| 2.5 生物源纳米硒对HepG2细胞凋亡率的影响 | 第66-67页 |
| 2.6 Caspase级联反应在bioSeNPs诱导HepG2细胞凋亡中的作用 | 第67-69页 |
| 3 讨论 | 第69-71页 |
| 4 结论 | 第71-74页 |
| 第五章 生物源纳米硒对裸鼠肝癌HepG2细胞移植瘤抑制作用的研究 | 第74-90页 |
| 1 材料与方法 | 第75-78页 |
| 1.1 实验材料 | 第75-76页 |
| 1.1.1 生物源纳米硒的制备 | 第75页 |
| 1.1.2 细胞系 | 第75页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第75页 |
| 1.1.4 主要试剂 | 第75页 |
| 1.1.5 主要仪器 | 第75-76页 |
| 1.2 实验方法 | 第76-78页 |
| 1.2.1 HepG2细胞培养 | 第76页 |
| 1.2.2 裸鼠移植瘤模型的建立 | 第76页 |
| 1.2.3 实验设计 | 第76-77页 |
| 1.2.4 血液学指标检测 | 第77页 |
| 1.2.5 生理生化指标检测 | 第77页 |
| 1.2.6 组织病理学检测 | 第77页 |
| 1.2.7 肝脏组织抗氧化酶活性和丙二醛含量的测定 | 第77页 |
| 1.2.8 裸鼠主要器官组织硒含量的测定 | 第77-78页 |
| 1.2.9 统计学分析 | 第78页 |
| 2 结果 | 第78-86页 |
| 2.1 HepG2细胞裸鼠移植瘤模型的建立 | 第78页 |
| 2.2 生物源纳米硒对HepG2细胞移植瘤裸鼠生长的影响 | 第78-79页 |
| 2.3 生物源纳米硒对HepG2移植瘤裸鼠体重和肝脏指数的影响 | 第79页 |
| 2.4 生物源纳米硒对HepG2移植瘤裸鼠血液学指标的影响 | 第79-81页 |
| 2.5 生物源纳米硒对HepG2移植瘤裸鼠机体损伤的影响 | 第81-82页 |
| 2.6 HepG2细胞移植瘤裸鼠主要内脏器官组织的病理学检测 | 第82-84页 |
| 2.7 生物源纳米硒对HepG2细胞移植瘤裸鼠肝脏组织中抗氧化水平和脂质过氧化水平的影响 | 第84-85页 |
| 2.8 生物源纳米硒对HepG2细胞移植瘤裸鼠主要内脏组织中硒含量的影响 | 第85-86页 |
| 3 讨论 | 第86-88页 |
| 4 结论 | 第88-90页 |
| 第六章 纳米硒非酶传感器的构建及其对过氧化氢的检测 | 第90-98页 |
| 1 材料与方法 | 第91-92页 |
| 1.1 实验材料 | 第91页 |
| 1.1.1 生物源纳米硒 | 第91页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第91页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第91页 |
| 1.2 实验方法 | 第91-92页 |
| 1.2.1 生物源纳米硒非酶传感器的制备 | 第91-92页 |
| 1.2.2 生物源纳米硒非酶传感器检测过氧化氢的条件优化 | 第92页 |
| 1.2.3 生物源纳米硒非酶传感器对过氧化氢的检测 | 第92页 |
| 1.2.4 统计分析 | 第92页 |
| 2 结果 | 第92-95页 |
| 2.1 生物源纳米硒非酶传感器检测过氧化氢的条件优化 | 第92-93页 |
| 2.2 生物源纳米硒非酶传感器的电催化性能 | 第93-94页 |
| 2.3 生物源纳米硒非酶传感器检测过氧化氢方法的建立 | 第94-95页 |
| 3 讨论 | 第95页 |
| 4 结论 | 第95-98页 |
| 全文结论及创新点 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-118页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第118-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 个人简历及联系方式 | 第124页 |
