| 摘要 | 第5-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 序言 | 第14-21页 |
| 1.研究背景 | 第14-17页 |
| 1.1 痛风的中西医认知以及治疗原则 | 第14-15页 |
| 1.2 虎杖、桂枝主要有效成分以及中药药对的研究意义 | 第15页 |
| 1.3 急性痛风关节炎模型的代谢组学研究现状 | 第15-17页 |
| 2.研究的创新点 | 第17-18页 |
| 3.设计思想和研究方案 | 第18-21页 |
| 3.1 设计思想 | 第18页 |
| 3.2 研究方案 | 第18-21页 |
| 实验部分 | 第21-48页 |
| 第一部分 虎杖-桂枝药对配伍药效方法学考察 | 第21-28页 |
| 1.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1.1 主要仪器 | 第21页 |
| 1.1.2 药材和试剂 | 第21-22页 |
| 1.1.3 药物提取和制备 | 第22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-23页 |
| 1.2.1 虎杖-桂枝药对样品HPLC测定方法学考察 | 第22-23页 |
| 1.3 数据处理 | 第23页 |
| 1.4 实验结果 | 第23-25页 |
| 1.4.1 线性范围 | 第23-24页 |
| 1.4.2 精密度实验结果 | 第24页 |
| 1.4.3 重复性和稳定性实验结果 | 第24-25页 |
| 1.4.4 回收率实验结果 | 第25页 |
| 1.5 虎杖桂枝药对水提液HPLC含量测定结果 | 第25-26页 |
| 1.6 讨论 | 第26-28页 |
| 第二部分 虎杖桂枝对急性痛风性关节炎模型大鼠足肿胀的影响 | 第28-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第28页 |
| 2.1.2 药材和试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第28页 |
| 2.1.4 药物提取和制备 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29页 |
| 2.2.1 实验造模、给药 | 第29页 |
| 2.2.2 足肿胀率测定 | 第29页 |
| 2.3 大鼠关节足肿胀的测量结果 | 第29-31页 |
| 2.4 讨论 | 第31-33页 |
| 第三部分 虎杖桂枝药对对代谢组学的影响 | 第33-45页 |
| 3.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第34页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 代谢样本血浆和尿液的收集 | 第34页 |
| 3.2.2 样品准备 | 第34-35页 |
| 3.2.3 NMR实验 | 第35页 |
| 3.2.4 NMR数据处理 | 第35页 |
| 3.2.5 数据分析 | 第35-36页 |
| 3.3 代谢组学实验结果 | 第36-43页 |
| 3.3.1 血浆与尿液的1H-NMR代谢物谱分析 | 第36-37页 |
| 3.3.2 造模24小时时间点的大鼠机体代谢指纹谱的变化 | 第37-38页 |
| 3.3.3 与急性痛风性关节炎相关的潜在生物标志物的鉴定[47-49] | 第38-41页 |
| 3.3.4 MetPA分析代谢途径 | 第41-43页 |
| 3.4 讨论 | 第43-45页 |
| 第四部分 炎症因子指标检测 | 第45-48页 |
| 4.1 实验材料 | 第45页 |
| 4.1.1 实验试剂盒 | 第45页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验准备 | 第45页 |
| 4.2.2 IL-1β测定方法 | 第45-46页 |
| 4.2.3 TNF-α测定方法 | 第46页 |
| 4.3 炎症因子IL-1β、TNF-α检测结果 | 第46-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-48页 |
| 总结与展望 | 第48-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第58页 |
