| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 中英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-25页 |
| 1.1 多糖的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.1.1 多糖的提取分离 | 第14页 |
| 1.1.2 多糖药理作用 | 第14-16页 |
| 1.2 骨质疏松的研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2.1 骨质疏松的现状 | 第16-18页 |
| 1.2.2 骨质疏松的治疗 | 第18-19页 |
| 1.3 几种常用补肾壮骨中草药的药理活性 | 第19-20页 |
| 1.3.1 牛膝的药理活性 | 第19页 |
| 1.3.2 仙茅的药理活性 | 第19-20页 |
| 1.3.3 狗脊的药理活性 | 第20页 |
| 1.3.4 啤酒花的药理活性 | 第20页 |
| 1.4 骨质疏松相关信号通路的研究 | 第20-23页 |
| 1.4.1 Wnt/β-catenin信号通路 | 第20-21页 |
| 1.4.2 RANK/RANKL信号通路 | 第21页 |
| 1.4.3 Runx2介导的信号通路 | 第21-22页 |
| 1.4.4 骨形态发生蛋白介导的信号通路 | 第22页 |
| 1.4.5 其他通路 | 第22-23页 |
| 1.5 代谢组学的应用 | 第23页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第23-25页 |
| 第二章 CO多糖对去势模型大鼠骨组织形态计量学的影响 | 第25-42页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第25页 |
| 2.1.3 实验样品 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-34页 |
| 2.2.1 动物饲养 | 第26页 |
| 2.2.2 动物模型建立和给药 | 第26-27页 |
| 2.2.3 不脱钙骨标本的包埋 | 第27-29页 |
| 2.2.4 不脱钙骨标本上段干骺端切片的制备 | 第29-30页 |
| 2.2.5 骨标本上段干骺端形态计量学指标检测 | 第30-31页 |
| 2.2.6 不脱钙骨标本中段皮质骨切片的制备 | 第31-32页 |
| 2.2.7 骨标本中段皮质骨形态计量学指标检测 | 第32-34页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第34-41页 |
| 2.3.1 CO多糖对模型大鼠骨标本上段干骺端形态计量学的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.2 CO多糖对模型大鼠骨标本中段皮质骨形态计量学的影响 | 第36-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 多糖对MC3T3-E1细胞分化的影响及其机制研究 | 第42-95页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第42-44页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.2 仪器设备 | 第43页 |
| 3.1.3 实验细胞 | 第43页 |
| 3.1.4 实验样品 | 第43-44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-53页 |
| 3.2.1 MC3T3-E1细胞的冻存和复苏 | 第44-45页 |
| 3.2.2 MC3T3-E1细胞形态观察及鉴定 | 第45页 |
| 3.2.3 MC3T3-E1细胞的培养和传代 | 第45-46页 |
| 3.2.4 多糖对MC3T3-E1细胞增殖的影响 | 第46页 |
| 3.2.5 多糖对MC3T3-E1细胞分化的影响 | 第46-48页 |
| 3.2.6 多糖对MC3T3-E1细胞矿化的影响 | 第48-49页 |
| 3.2.7 多糖对MC3T3-E1细胞分化中关键基因表达的影响 | 第49-51页 |
| 3.2.8 多糖对MC3T3-E1细胞分化中关键蛋白表达的影响 | 第51-53页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第53-93页 |
| 3.3.1 MC3T3-E1细胞形态观察及鉴定 | 第53-55页 |
| 3.3.2 多糖对MC3T3-E1细胞增殖的影响 | 第55-59页 |
| 3.3.3 多糖对MC3T3-E1细胞分化的影响 | 第59-67页 |
| 3.3.4 多糖对MC3T3-E1细胞矿化的影响 | 第67-77页 |
| 3.3.5 多糖对MC3T3-E1细胞分化中关键基因表达的影响 | 第77-92页 |
| 3.3.6 多糖对MC3T3-E1细胞分化中关键蛋白表达的影响 | 第92-93页 |
| 3.4 本章小结 | 第93-95页 |
| 第四章 代谢组学分析AB多糖抗骨质疏松作用机制 | 第95-107页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第95页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第95页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第95页 |
| 4.1.3 实验样品 | 第95页 |
| 4.2 实验方法 | 第95-99页 |
| 4.2.1 动物模型建立和血清收集 | 第95-96页 |
| 4.2.2 血清样品的处理 | 第96页 |
| 4.2.3 UPLC/Q-TOF-MS分析 | 第96页 |
| 4.2.4 UPLC/Q-TOF-MS方法验证 | 第96-99页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第99-105页 |
| 4.3.1 血清的UPLC/Q-TOF-MS分析及方法验证 | 第99-101页 |
| 4.3.2 AB多糖对骨质疏松代谢物和代谢标志物的影响 | 第101-104页 |
| 4.3.3 与骨质疏松相关的代谢通路分析 | 第104-105页 |
| 4.4 本章小结 | 第105-107页 |
| 第五章 结论与展望 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-119页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第119-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
