| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略词表 | 第13-15页 |
| 1 综述 | 第15-24页 |
| 1.1 植物逆境生理研究概况 | 第15-18页 |
| 1.1.1 非生物胁迫对植物的影响 | 第15-16页 |
| 1.1.2 生物胁迫对植物的影响 | 第16-18页 |
| 1.2 拟南芥ANKTM家族基因概况 | 第18-24页 |
| 1.2.1 锚蛋白结构特征 | 第19-20页 |
| 1.2.2 锚蛋白的生物学功能研究进展 | 第20-21页 |
| 1.2.3 ANK-TM基因家族 | 第21-24页 |
| 2 拟南芥ANK-TM2基因家族纯合突变体的筛选与鉴定 | 第24-37页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-30页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 拟南芥的培养与生长条件 | 第24-25页 |
| 2.1.3 实验原理 | 第25-26页 |
| 2.1.4 引物设计 | 第26页 |
| 2.1.5 拟南芥DNA的提取(CTAB法) | 第26-27页 |
| 2.1.6 拟南芥总RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.1.7 反转录制备拟南芥cDNA(TIANGEN试剂盒) | 第28-29页 |
| 2.1.8 荧光定量PCR | 第29-30页 |
| 2.2 纯合突变体鉴定结果 | 第30-33页 |
| 2.3 荧光定量PCR | 第33-35页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第35-37页 |
| 3 拟南芥ANK-TM突变体在逆境胁迫下的生理表型研究 | 第37-49页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-39页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2 实验结果 | 第39-48页 |
| 3.2.1 钙胁迫 | 第39-44页 |
| 3.2.2 NaCl(120mM)胁迫 | 第44-46页 |
| 3.2.3 Sorbitol(400mM)胁迫 | 第46-48页 |
| 3.3 分析与讨论 | 第48-49页 |
| 4 拟南芥ANK-TM2基因家族抗病性研究 | 第49-59页 |
| 4.1 实验原理 | 第49-50页 |
| 4.2 材料与方法 | 第50-53页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第50页 |
| 4.2.2 拟南芥的培养与生长条件 | 第50页 |
| 4.2.3 培养基的配制 | 第50-51页 |
| 4.2.4 注菌 | 第51页 |
| 4.2.5 涂板 | 第51-53页 |
| 4.3 抗病实验结果 | 第53-57页 |
| 4.3.1 突变体抗病表型 | 第53-54页 |
| 4.3.2 菌落数统计 | 第54-56页 |
| 4.3.3 抗病性分析 | 第56-57页 |
| 4.4 讨论与分析 | 第57-59页 |
| 5 拟南芥ANK-TM基因家族的克隆与表达载体的构建 | 第59-85页 |
| 5.1 材料与方法 | 第59-73页 |
| 5.1.1 实验材料与实验试剂 | 第59-61页 |
| 5.1.2 GATEWAY技术 | 第61-62页 |
| 5.1.3 引物设计 | 第62页 |
| 5.1.4 基因克隆及入门载体的构建 | 第62-69页 |
| 5.1.5 植物表达载体的构建与转化 | 第69-72页 |
| 5.1.6 花序浸染法转化拟南芥 | 第72-73页 |
| 5.1.7 转化植株纯合后代的筛选 | 第73页 |
| 5.2 实验结果 | 第73-84页 |
| 5.2.1 基因表达模式分析 | 第73-75页 |
| 5.2.2 超表达载体构建及其对拟南芥的转化 | 第75-78页 |
| 5.2.3 GUS融合表达载体构建 | 第78-81页 |
| 5.2.4 GFP融合表达载体构建及拟南芥植株的转化 | 第81-84页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第84-85页 |
| 6 总结与讨论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-89页 |
| 附录 | 第89-91页 |
