| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 英文缩写 | 第7-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 果蝇大脑中枢神经系统结构 | 第11-15页 |
| 1.1.1 果蝇胚胎神经干细胞及其分化特征 | 第12-13页 |
| 1.1.2 果蝇幼虫神经干细胞及其分化特征 | 第13-15页 |
| 1.2 果蝇幼虫视觉中心的形成与发育的过程 | 第15-17页 |
| 1.3 Spc105R基因研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 BRC基因研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4.1 BRC基因和蛋白结构 | 第18页 |
| 1.4.2 BRC蛋白在果蝇发育中的作用 | 第18-19页 |
| 1.5 OAZ基因研究进展 | 第19-20页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第2章 材料和方法 | 第21-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.1.1 果蝇品系 | 第21页 |
| 2.1.2 实验所用抗体 | 第21-22页 |
| 2.1.3 免疫组化中的试剂和配方 | 第22-23页 |
| 2.1.4 果蝇培养基配制 | 第23-24页 |
| 2.1.5 实验所需仪器设备 | 第24页 |
| 2.2 研究方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 RNAi品系 | 第24-25页 |
| 2.2.2 FLP-out系统 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.3.1 Spc105R×NP7340-Ga14或c855a-Ga14实验中果蝇幼虫的获得 | 第26-27页 |
| 2.3.2 Spc105R×FLP-out实验中果蝇幼虫的获得 | 第27页 |
| 2.3.3 Broad-RNAi×c855a-Ga14实验中果蝇幼虫的获得 | 第27-28页 |
| 2.3.4 Broad过表达克隆实验 | 第28页 |
| 2.3.5 OAZ×Ga14品系杂交实验中果蝇幼虫的获得 | 第28-29页 |
| 2.3.6 免疫组化分析 | 第29-30页 |
| 2.3.7 BrdU染色检测 | 第30-31页 |
| 第3章 结果与分析 | 第31-50页 |
| 3.1 Spc105R基因敲除对视觉中心神经上皮细胞的影响 | 第31-38页 |
| 3.1.1 Spc105R基因敲除对视觉中心神经上皮细胞数目的影响 | 第31-35页 |
| 3.1.2 Spc105R基因敲除对果蝇大脑视叶神经板和脑髓神经节的发育的影响 | 第35-36页 |
| 3.1.3 Spc105蛋白影响幼虫视觉中心神经上皮细胞的细胞分裂 | 第36-37页 |
| 3.1.4 Spc105R×FLP-out实验结果及分析 | 第37-38页 |
| 3.2 BRC基因敲除对视觉中心神经上皮细胞的影响 | 第38-45页 |
| 3.2.1 BRC基因敲除对果蝇大脑视叶神经板和脑髓神经节发育的影响 | 第38-41页 |
| 3.2.2 BRC蛋白影响幼虫视觉中心神经上皮细胞的细胞分裂速度 | 第41-45页 |
| 3.3 OAZ基因敲除对视觉中心神经上皮细胞的影响 | 第45-50页 |
| 3.3.1 OAZ对果蝇大脑视叶神经上皮细胞的维持可能不是必需的 | 第45-48页 |
| 3.3.2 OAZ对果蝇大脑视叶神经板和脑脊神经节的发育可能不是必需的 | 第48-50页 |
| 第4章 总结与讨论 | 第50-53页 |
| 4.1 Spc105R基因部分的论文总结与讨论 | 第50-51页 |
| 4.2 BRC基因部分的论文总结与讨论 | 第51-52页 |
| 4.3 OAZ基因部分的论文总结与讨论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
