| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第13-20页 |
| 1.1 细胞自噬概述 | 第13页 |
| 1.2 细胞自噬研究进展 | 第13-15页 |
| 1.2.1 自噬的种类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 自噬的过程 | 第14页 |
| 1.2.3 自噬相关基因和自噬相关蛋白 | 第14-15页 |
| 1.3 黄瓜花叶病毒的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.4 自噬在非生物胁迫中的地位 | 第16页 |
| 1.5 细胞自噬与动植物免疫之间的关系 | 第16-17页 |
| 1.6 细胞自噬对植物程序性死亡的控制 | 第17页 |
| 1.7 自噬检测方法 | 第17-19页 |
| 1.7.1 透射电镜技术 | 第17页 |
| 1.7.2 荧光染料染色技术 | 第17-18页 |
| 1.7.3 特异性分子标记 | 第18页 |
| 1.7.4 基于LC3和P62自噬体标记蛋白的检测方法 | 第18页 |
| 1.7.5 基于“自噬流”的分析 | 第18-19页 |
| 1.7.6 自噬相关基因转录水平检测 | 第19页 |
| 1.8 研究内容与目的意义 | 第19-20页 |
| 第二章 构建Nb-CFP-ATG8f转基因植株 | 第20-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂盒和引物合成公司 | 第20-21页 |
| 2.1.4 供试烟草及培养条件 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 转基因植株Nb-CFP-ATG8f的构建 | 第21-23页 |
| 2.2.2 转基因植株Nb-CFP-ATG8f的筛选和验证 | 第23页 |
| 2.2.3 激光共聚焦显微镜样品处理 | 第23页 |
| 2.2.4 电镜样品的制备 | 第23-24页 |
| 2.3 实验结果 | 第24-27页 |
| 2.3.1 转基因植株Nb-CFP-ATG8f的构建 | 第24页 |
| 2.3.2 Nb-CFP-ATG8f转基因植株的筛选和验证 | 第24-26页 |
| 2.3.3 饥饿条件诱导自噬体的观察 | 第26-27页 |
| 2.3.4 饥饿诱导自噬体亚细胞结构的观察 | 第27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 CMV侵染能够引起烟草的细胞自噬 | 第29-42页 |
| 3.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第29页 |
| 3.1.3 主要试剂盒和引物合成公司 | 第29-30页 |
| 3.1.4 供试烟草材料及CMV病毒 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-35页 |
| 3.2.1 激光共聚焦显微镜和透射电镜样品处理 | 第30页 |
| 3.2.2 WesternBlot检测LC3和P62蛋白的方法 | 第30-32页 |
| 3.2.3 自噬相关基因检测 | 第32-35页 |
| 3.3 实验结果 | 第35-40页 |
| 3.3.1 CMV侵染后烟草细胞自噬诱导观察 | 第35-36页 |
| 3.3.2 CMV侵染后烟草亚细胞结构的研究 | 第36-38页 |
| 3.3.3 CMV侵染对烟草LC3和P62的表达影响 | 第38-39页 |
| 3.3.4 CMV侵染对烟草细胞自噬相关基因表达特征分析 | 第39-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-42页 |
| 第四章 全文结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 附录 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 作者简历 | 第52页 |
