摘要 | 第2-4页 |
Summary | 第4-5页 |
第一章 引言 | 第8-21页 |
1.1 苜蓿褐斑病研究概况 | 第8-11页 |
1.1.1 苜蓿褐斑病的分布与危害 | 第9-10页 |
1.1.2 苜蓿褐斑病的发生及流行 | 第10-11页 |
1.2 植物抗病性 | 第11-18页 |
1.2.1 植物抗病机制 | 第11-13页 |
1.2.2 植物诱导抗病性的生理生化机制 | 第13-14页 |
1.2.3 植物抗病基因类型 | 第14-16页 |
1.2.4 植物抗病基因克隆研究进展 | 第16-18页 |
1.3 高通量转录组测序研究进展 | 第18-20页 |
1.3.1 高通量测序技术 | 第18-19页 |
1.3.2 高通量转录组测序及应用 | 第19-20页 |
1.4 研究目的和意义 | 第20-21页 |
第二章 苜蓿假盘菌诱导下苜蓿抗、感褐斑病株系中几种酶活性变化的研究 | 第21-29页 |
2.1 材料和方法 | 第21-23页 |
2.1.1 试验材料 | 第21页 |
2.1.2 接种和取样 | 第21-22页 |
2.1.3 PAO和DAO测定方法 | 第22页 |
2.1.4 CAT测定方法 | 第22-23页 |
2.1.5 SOD测定方法 | 第23页 |
2.1.6 相对酶活性的计算 | 第23页 |
2.1.7 数据处理 | 第23页 |
2.2 结果与分析 | 第23-26页 |
2.2.1 相对PAO的活性变化 | 第23-24页 |
2.2.2 相对DAO的活性变化 | 第24-25页 |
2.2.3 相对CAT的活性变化 | 第25-26页 |
2.2.4 相对SOD的活性变化 | 第26页 |
2.3 讨论 | 第26-29页 |
第三章 苜蓿假盘菌诱导下苜蓿抗、感褐斑病株系叶片转录组测序分析 | 第29-44页 |
3.1 材料与方法 | 第29-33页 |
3.1.1 试验材料 | 第29页 |
3.1.2 总RNA的提取 | 第29-30页 |
3.1.3 总RNA质量检测 | 第30-31页 |
3.1.4 总RNA浓度检测 | 第31页 |
3.1.5 cDNA文库的准备和转录组测序 | 第31页 |
3.1.6 数据过滤和de novo组装 | 第31-32页 |
3.1.7 功能注释 | 第32-33页 |
3.2 结果与分析 | 第33-43页 |
3.2.1 总RNA质量分析 | 第33-34页 |
3.2.2 转录组测序、de novo组装和序列分析 | 第34-37页 |
3.2.3 功能注释 | 第37-40页 |
3.2.4 GO注释 | 第40-41页 |
3.2.5 COG注释结果 | 第41页 |
3.2.6 KEGG注释结果 | 第41-43页 |
3.3 讨论 | 第43-44页 |
第四章 苜蓿抗、感褐斑病株系中基因差异表达分析 | 第44-58页 |
4.1 材料与方法 | 第44-47页 |
4.1.1 材料 | 第44页 |
4.1.2 差异基因分析方法 | 第44-45页 |
4.1.3 引物设计方法 | 第45-46页 |
4.1.4 差异表达的8个抗病相关基因在时间上的表达模式分析方法 | 第46-47页 |
4.2 结果与分析 | 第47-54页 |
4.2.1 苜蓿抗、感褐斑病株系中显著差异表达转录本分析结果 | 第47-48页 |
4.2.2 GO功能和KEGG通路显著性富集分析结果 | 第48-49页 |
4.2.3 实时荧光定量验证结果 | 第49-50页 |
4.2.4 苜蓿抗褐斑病相关基因qReal Time-PCR分析结果 | 第50-52页 |
4.2.5 参与抗病信号途径的差异表达基因 | 第52页 |
4.2.6 差异表达的转录因子 | 第52-53页 |
4.2.7 差异表达的抗病相关基因 | 第53页 |
4.2.8 植物抗病基因和抗氧化相关基因 | 第53-54页 |
4.3 讨论 | 第54-58页 |
第五章 结论 | 第58-60页 |
5.1 抗、感苜蓿株系叶片感染Pseudopeziza medicaginis病菌后几种酶活性变化 | 第58页 |
5.2 苜蓿抗褐斑病转录组分析 | 第58-59页 |
5.3 苜蓿抗褐斑病相关基因差异表达分析 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-68页 |
附图 | 第68-72页 |
附表 | 第72-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
第一导师简介 | 第91-92页 |
第二导师简介 | 第92-93页 |
作者简介 | 第93-94页 |