| 附表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-22页 |
| 1.1 小菜蛾概况 | 第14页 |
| 1.2 小菜蛾抗药性 | 第14-18页 |
| 1.2.1 小菜蛾抗药性的发生情况 | 第14-15页 |
| 1.2.2 小菜蛾对阿维菌素的抗性 | 第15-16页 |
| 1.2.3 小菜蛾抗性机理研究 | 第16-18页 |
| 1.3 实时荧光定量技术 | 第18-19页 |
| 1.3.1 qRT-PCR技术的原理 | 第18-19页 |
| 1.3.2 qRT-PCR技术的应用 | 第19页 |
| 1.4 RNA干扰技术 | 第19-20页 |
| 1.4.1 RNA干扰的原理 | 第19页 |
| 1.4.2 RNA干扰的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 研究的内容和目的意义 | 第20-22页 |
| 1.5.1 研究内容和方法 | 第20页 |
| 1.5.2 研究目的意义 | 第20-22页 |
| 第二章 小菜蛾室内饲养及抗性筛选 | 第22-25页 |
| 2.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 供试昆虫 | 第22页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 小菜蛾的饲养 | 第22页 |
| 2.2.2 供试蔬菜 | 第22页 |
| 2.2.3 小菜蛾对阿维菌素的生物测定 | 第22-23页 |
| 2.2.4 阿维菌素抗性小菜蛾的汰选 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-24页 |
| 2.3.1 阿维菌素抗性小菜蛾的选育 | 第23-24页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第24-25页 |
| 第三章 小菜蛾P-糖蛋白基因cDNA全长的克隆及特征分析 | 第25-46页 |
| 3.1 试验材料 | 第25-26页 |
| 3.1.1 供试昆虫 | 第25页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第25页 |
| 3.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第25-26页 |
| 3.1.4 培养基及常用溶液 | 第26页 |
| 3.1.5 引物和测序 | 第26页 |
| 3.1.6 生物信息学分析工具 | 第26页 |
| 3.2 试验方法 | 第26-35页 |
| 3.2.1 RNA的提取 | 第26页 |
| 3.2.2 cDNA的合成 | 第26-27页 |
| 3.2.3 小菜蛾P-糖蛋白基因全长克隆 | 第27-32页 |
| 3.2.4 生物信息学分析 | 第32-33页 |
| 3.2.5 转录水平表达模式分析 | 第33-35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-44页 |
| 3.3.1 小菜蛾总RNA的提取 | 第35-36页 |
| 3.3.2 小菜蛾P-糖蛋白基因片段的克隆 | 第36-37页 |
| 3.3.3 小菜蛾P-糖蛋白基因cDNA全长的克隆 | 第37-38页 |
| 3.3.4 小菜蛾P-糖蛋白基因cDNA全长序列分析 | 第38-42页 |
| 3.3.5 小菜蛾P-糖蛋白基因的同源性分析 | 第42-43页 |
| 3.3.6 小菜蛾P-糖蛋白基因在不同龄期和不同组织中的表达量分析 | 第43-44页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第44-46页 |
| 第四章 小菜蛾P-糖蛋白基因对阿维菌素的反应模式 | 第46-53页 |
| 4.1 试验材料 | 第46-47页 |
| 4.1.1 供试昆虫 | 第46页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第46页 |
| 4.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第46页 |
| 4.1.4 培养基及常用溶液 | 第46-47页 |
| 4.1.5 引物和测序 | 第47页 |
| 4.1.6 生物信息学分析工具 | 第47页 |
| 4.2 试验方法 | 第47-49页 |
| 4.2.1 小菜蛾对阿维菌素的生物测定 | 第47页 |
| 4.2.2 小菜蛾RNA提取 | 第47页 |
| 4.2.3 cDNA的合成 | 第47页 |
| 4.2.4 PxPgp1基因全长克隆 | 第47-48页 |
| 4.2.5 全长基因序列的分析 | 第48页 |
| 4.2.6 PxPgp1相对表达量分析 | 第48-49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-52页 |
| 4.3.1 不同种群小菜蛾的PxPgp1全长基因扩增 | 第49-50页 |
| 4.3.2 不同种群小菜蛾PxPgp1全长的序列的差异分析 | 第50页 |
| 4.3.3 阿维菌素刺激下PxPgp1的相对表达量分析 | 第50-51页 |
| 4.3.4 不同种群小菜蛾的PxPgp1的相对表达量在差异分析 | 第51-52页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第52-53页 |
| 第五章 小菜蛾P-糖蛋白基因的RNA干扰 | 第53-59页 |
| 5.1 试验材料 | 第53-54页 |
| 5.1.1 供试小菜蛾 | 第53页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第53页 |
| 5.1.3 主要试剂及试剂盒 | 第53页 |
| 5.1.4 培养基及常用溶液 | 第53页 |
| 5.1.5 引物和测序 | 第53页 |
| 5.1.6 生物信息学工具 | 第53-54页 |
| 5.2 试验方法 | 第54-57页 |
| 5.2.1 RNA的提取 | 第54页 |
| 5.2.2 cDNA的合成 | 第54页 |
| 5.2.3 dsRNA合成引物的筛选 | 第54-55页 |
| 5.2.4 dsRNA的体外合成 | 第55-56页 |
| 5.2.5 dsRNA的微量注射 | 第56页 |
| 5.2.6 基因相对表达量分析 | 第56-57页 |
| 5.3 结果与分析 | 第57-58页 |
| 5.3.1 小菜蛾RNA的提取 | 第57页 |
| 5.3.2 PxPgp1基因的dsRNA引物筛选 | 第57-58页 |
| 5.4 小结与讨论 | 第58-59页 |
| 第六章 全文结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 附录 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 作者简历 | 第76页 |
