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伊通河底泥微生物群落结构解析

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第一章 前言第11-18页
    1.1 伊通河概述及其现状第11-13页
        1.1.1 伊通河概述第11-12页
        1.1.2 伊通河的污染来源及其危害第12-13页
    1.2 PCR-DGGE 及其在微生物生态学中的应用进展第13-16页
        1.2.1 PCR-DGGE 技术概述第14页
        1.2.2 PCR-DGGE 的技术特点第14-15页
        1.2.3 PCR-DGGE 的应用第15-16页
    1.3 本研究的目的及意义第16-18页
第二章 底泥微生物基因组提取方法的探索第18-30页
    2.1 引言第18-19页
    2.2 材料与方法第19-25页
        2.2.1 实验材料第19-20页
        2.2.2 实验试剂与仪器第20-22页
            2.2.2.1 实验试剂第20-21页
            2.2.2.2 实验仪器第21-22页
        2.2.3 实验方法第22-25页
            2.2.3.1 基因组提取第22-24页
            2.2.3.2 PCR 扩增第24-25页
    2.3 实验结果与分析第25-28页
        2.3.1 基因组提取结果分析第25-27页
            2.3.1.1 琼脂糖电泳分析第26页
            2.3.1.2 紫外测定分析第26-27页
        2.3.2 PCR 扩增结果及分析第27-28页
    2.4 本章小结第28-30页
第三章 底泥细菌 PCR-DGGE第30-49页
    3.1 引言第30-31页
    3.2 材料与方法第31-38页
        3.2.1 实验材料第31页
        3.2.2 实验试剂与仪器第31-35页
            3.2.2.1 实验试剂第32-35页
            3.2.2.2 实验仪器第35页
        3.2.3 实验方法第35-38页
            3.2.3.1 基因组的提取第35-36页
            3.2.3.2 PCR 条件优化第36-37页
            3.2.3.3 DGGE 条件优化第37页
            3.2.3.4 DGGE 条带的扩增及其序列解析第37-38页
    3.3 实验结果与分析第38-48页
        3.3.1 土壤样品基因组提取第38-39页
        3.3.2 PCR 条件优化第39-42页
            3.3.2.1 退火温度的 PCR 琼脂糖电泳结果第39-40页
            3.3.2.2 模板浓度的摸索第40-42页
        3.3.3 DGGE 及测序结果分析第42-48页
    3.4 本章小结第48-49页
第四章 底泥真菌 PCR-DGGE第49-59页
    4.1 引言第49-50页
    4.2 材料与方法第50-52页
        4.2.1 实验材料第50页
        4.2.2 实验试剂与仪器第50页
        4.2.3 实验方法第50-52页
            4.2.3.1 PCR 条件优化第50-52页
            4.2.3.2 DGGE 条件优化第52页
    4.3 实验结果与分析第52-57页
        4.3.1 PCR 条件优化第52-54页
        4.3.2 DGGE 及测序结果分析第54-57页
    4.4 本章小结第57-59页
第五章 总结与展望第59-61页
    5.1 总结第59-60页
    5.2 展望第60-61页
参考文献第61-68页
作者简介及在学期间所取得的科研成果第68-69页
致谢第69页

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