| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-55页 |
| 1.1 解旋酶的生物学特性及工作机理 | 第12-20页 |
| 1.1.1 解旋酶的结构特征及活性 | 第12-14页 |
| 1.1.2 参与核酸代谢的解旋酶实例 | 第14-18页 |
| 1.1.3 解旋酶的工作机理 | 第18-20页 |
| 1.2 解旋酶的常用研究技术和方法 | 第20-33页 |
| 1.2.1 解旋酶研究中的生物化学，生物物理和蛋白质组学手段 | 第20-31页 |
| 1.2.2 快速反应停流技术 | 第31-33页 |
| 1.3 RecQ解旋酶研究进展 | 第33-48页 |
| 1.3.1 RecQ解旋酶的结构和生物学特征 | 第34-38页 |
| 1.3.2 RECQL解旋酶的研究进展 | 第38-42页 |
| 1.3.3 BLM解旋酶的研究进展 | 第42-44页 |
| 1.3.4 WRN解旋酶的研究进展 | 第44-45页 |
| 1.3.5 RECQ4解旋酶的研究进展 | 第45-47页 |
| 1.3.6 RECQ5解旋酶的研究进展 | 第47-48页 |
| 1.4 镉的生物学毒性研究进展 | 第48-52页 |
| 1.4.1 镉的基本特征及生理作用 | 第48-49页 |
| 1.4.2 镉对DNA修复途径的影响 | 第49-51页 |
| 1.4.3 镉生物学毒性的其它方面 | 第51-52页 |
| 1.5 本课题产生的背景，研究目的和意义 | 第52-55页 |
| 第二章 RECQL解旋酶的生物学特性和解旋时工作状态的研究 | 第55-97页 |
| 2.1 材料与方法 | 第55-68页 |
| 2.1.1 材料 | 第55-58页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第58-68页 |
| 2.2 结果与分析 | 第68-94页 |
| 2.2.1 解旋酶RECQL突变体重组载体的构建 | 第68-70页 |
| 2.2.2 解旋酶RECQL及其突变体蛋白的表达纯化 | 第70-74页 |
| 2.2.3 解旋酶RECQL及其突变体蛋白聚集体状态的分析 | 第74-78页 |
| 2.2.4 解旋酶RECQL及其突变体蛋白与DNA底物结合活性的分析 | 第78-82页 |
| 2.2.5 解旋酶RECQL解旋工作状态的分析 | 第82-92页 |
| 2.2.6 RECQL及其突变体蛋白能够解旋不同类型的DNA底物 | 第92-94页 |
| 2.3 讨论 | 第94-96页 |
| 2.4 小结 | 第96-97页 |
| 第三章 镉诱导BLM解旋酶活力丧失机理的研究 | 第97-119页 |
| 3.1 材料与方法 | 第97-101页 |
| 3.1.1 材料 | 第97-98页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第98-101页 |
| 3.2 结果与分析 | 第101-115页 |
| 3.2.1 解旋酶BLM642-1290蛋白的表达纯化 | 第101-103页 |
| 3.2.2 镉对BLM蛋白活性的影响及结合BLM蛋白的计量学研究 | 第103-105页 |
| 3.2.3 镉结合BLM后会损坏蛋白的DNA结合活性 | 第105-110页 |
| 3.2.4 镉引起的BLM蛋白聚集化现象 | 第110-111页 |
| 3.2.5 DTT对Cd~(2+)调节DNA结合活性的影响以及EDTA对此过程的逆转作用 | 第111-114页 |
| 3.2.6 Cd~(2+)对BLM-DNA解旋活性的抑制作用不能被EDTA所逆转 | 第114-115页 |
| 3.3 讨论 | 第115-117页 |
| 3.4 小结 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-135页 |
| 附录 | 第135-144页 |
| 缩略词 | 第144-145页 |
| 致谢 | 第145-146页 |
| 作者简介 | 第146页 |
