| 中文摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-26页 |
| 1.1 功能化DNA生物传感器 | 第13-18页 |
| 1.1.1 功能化DNA荧光生物传感器 | 第13-14页 |
| 1.1.2 功能化DNA电化学生物传感器 | 第14-15页 |
| 1.1.3 功能化DNA比色生物传感器 | 第15-16页 |
| 1.1.4 功能化DNA电致发光生物传感器 | 第16-17页 |
| 1.1.5 其他功能化DNA生物传感器 | 第17-18页 |
| 1.2 微流控技术 | 第18-20页 |
| 1.2.1 微流控芯片的材料分类 | 第18-19页 |
| 1.2.2 微流控芯片的加工工艺 | 第19-20页 |
| 1.3 功能化DNA生物传感器在即时检测技术中的应用 | 第20-23页 |
| 1.3.1 功能化DNA电化学生物传感器用于即时检测 | 第20-21页 |
| 1.3.2 功能化DNA比色生物传感器用于即时检测 | 第21-22页 |
| 1.3.3 功能化DNA荧光生物传感器用于即时检测 | 第22-23页 |
| 1.3.4 其他功能化DNA生物传感器用于即时检测 | 第23页 |
| 1.4 论文研究的目的及主要内容 | 第23-26页 |
| 第二章 基于金属有机骨架平台的荧光生物传感器用于H5N1抗体的检测 | 第26-41页 |
| 2.1 前言 | 第26-28页 |
| 2.2 实验部分 | 第28-30页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.2 H_2dtoaCu-MOF的合成 | 第29页 |
| 2.2.3 MOF生物传感器的制备与靶标检测 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-40页 |
| 2.3.1 MOF生物传感器原理验证及可行性分析 | 第30-33页 |
| 2.3.2 不同剪切酶和吸附材料的性能对比 | 第33-35页 |
| 2.3.3 MOF浓度及反应时间的优化 | 第35-36页 |
| 2.3.4 ExoⅠ酶解过程的动力学解析 | 第36-37页 |
| 2.3.5 H_5N_1抗体的定量检测 | 第37-38页 |
| 2.3.6 H_5N_1抗体检测的选择性实验 | 第38-39页 |
| 2.3.7 血清中H_5N_1抗体的检测 | 第39-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 基于免修饰的ITO电极用于DNA甲基化的电化学检测和抑制药物的筛选 | 第41-55页 |
| 3.1 前言 | 第41-43页 |
| 3.2 实验部分 | 第43-45页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.2 电极的设计和制备 | 第44页 |
| 3.2.3 茎环结构DNA探针的制备 | 第44页 |
| 3.2.4 DNA探针的甲基化和DpnⅠ酶动力学分析 | 第44-45页 |
| 3.2.5 DNA甲基化的抑制类药物筛选 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-53页 |
| 3.3.1 免修饰电化学DNA生物传感器的原理验证及可行性分析 | 第45-48页 |
| 3.3.2 反应条件的优化和裂解酶的干扰实验 | 第48-51页 |
| 3.3.3 甲基化转移酶活性的动态分析 | 第51-52页 |
| 3.3.4 DNA甲基化水平的定量分析 | 第52-53页 |
| 3.3.5 甲基转移酶活性抑制类药物的筛选 | 第53页 |
| 3.4 本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 基于靶标响应DNA水凝胶调控的微流控纸芯片分析装置用于快速、便携的可视化多靶标检测 | 第55-74页 |
| 4.1 前言 | 第55-57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-65页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第57-60页 |
| 4.2.2 丙烯酸亚磷酰胺单体的合成 | 第60-61页 |
| 4.2.3 DNA的合成和纯化 | 第61-62页 |
| 4.2.4 聚丙烯酰胺DNA的制备 | 第62页 |
| 4.2.5 μPAD的设计和制作 | 第62页 |
| 4.2.6 DNA水凝胶填充优化 | 第62-63页 |
| 4.2.7 DNA水凝胶集成μPAD的制备 | 第63-64页 |
| 4.2.8 样品的可视化检测 | 第64-65页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 4.3.1 DNA水凝胶集成μPAD的检测原理 | 第65-67页 |
| 4.3.2 DNA水凝胶集成μPAD的可行性分析 | 第67-68页 |
| 4.3.3 可卡因的定性检测 | 第68-70页 |
| 4.3.4 选择性分析和实际样品检测 | 第70-71页 |
| 4.3.5 通用性论证及基于μPAD的多靶标检测 | 第71-73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第五章 基于靶标响应水凝胶调控串联酶催化协同微流控纸芯片分析装置用于可视化半定量检测 | 第74-90页 |
| 5.1 前言 | 第74-75页 |
| 5.2 实验部分 | 第75-81页 |
| 5.2.1 试剂和仪器 | 第75-77页 |
| 5.2.2 丙烯酸亚磷酰胺单体的合成 | 第77-79页 |
| 5.2.3 DNA的合成和纯化 | 第79页 |
| 5.2.4 聚丙烯酰胺DNA的制备 | 第79页 |
| 5.2.5 酶包埋DNA水凝胶的制备 | 第79页 |
| 5.2.6 μPAD的设计和制作 | 第79-80页 |
| 5.2.7 样品的可视化半定量检测和定量分析 | 第80-81页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第81-89页 |
| 5.3.1 基于酶包埋DNA水凝胶联用μPAD的检测原理 | 第81-83页 |
| 5.3.2 基于酶包埋DNA水凝胶联用μPAD的可行性分析 | 第83-84页 |
| 5.3.3 酶包埋DNA水凝胶的成胶比例优化 | 第84页 |
| 5.3.4 可卡因的可视化半定量检测和便携装置辅助定量分析 | 第84-85页 |
| 5.3.5 可卡因的选择性实验和复杂生物系统检测 | 第85-87页 |
| 5.3.6 酶包埋DNA水凝胶联用μPAD的通用性实验 | 第87-89页 |
| 5.4 本章小结 | 第89-90页 |
| 第六章 基于微流控距离读取纸芯片标尺协同靶标响应DNA水凝胶用于可视化定量检测 | 第90-105页 |
| 6.1 前言 | 第90-91页 |
| 6.2 实验部分 | 第91-98页 |
| 6.2.1 试剂和仪器 | 第91-95页 |
| 6.2.2 丙烯酸亚磷酰胺单体的合成 | 第95-96页 |
| 6.2.3 DNA的合成和纯化 | 第96-97页 |
| 6.2.4 聚丙烯酰胺DNA的制备 | 第97页 |
| 6.2.5 酶包埋DNA水凝胶的制备 | 第97页 |
| 6.2.6 μPAD的设计和制作 | 第97-98页 |
| 6.2.7 酶包埋DNA水凝胶的制备 | 第98页 |
| 6.2.8 样品的可视化定量检测 | 第98页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第98-104页 |
| 6.3.1 基于酶包埋DNA水凝胶联用μDiSH-PAD的检测原理 | 第98-99页 |
| 6.3.2 靶标浓度转导为可视化距离信号的可行性 | 第99-100页 |
| 6.3.3 μDiSH-PAD用于可卡因的定量检测 | 第100-101页 |
| 6.3.4 可卡因的选择性实验和实际样品检测 | 第101-102页 |
| 6.3.5 μDiSH-PAD与LC-MS的结果对比 | 第102-103页 |
| 6.3.6 μDiSH-PAD用于腺苷的定量检测 | 第103-104页 |
| 6.4 本章小结 | 第104-105页 |
| 总结与展望 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
| 个人简历 | 第124-125页 |
| 在学期间的科研成果及发表的学术论文 | 第125-126页 |
