摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-8页 |
常用缩写词中英文对照表 | 第12-13页 |
第1章 绪论 | 第13-25页 |
1.1 PFBC简介 | 第13-14页 |
1.2 XPR1基因 | 第14-17页 |
1.2.1 XPR1的结构和功能 | 第14-15页 |
1.2.2 XPR1在果蝇体内的同源基因 | 第15-17页 |
1.3 黑腹果蝇简介 | 第17-18页 |
1.4 CRISP/Cas9系统 | 第18-21页 |
1.4.1 CRISP/Cas9系统的发展及原理 | 第18-20页 |
1.4.2 CRISPR/Cas9系统的延伸应用 | 第20-21页 |
1.5 UAS-Gal4系统 | 第21-22页 |
1.6 位点专一性重组 | 第22-23页 |
1.7 果蝇的P因子插入 | 第23页 |
1.8 本课题开展的意义 | 第23-25页 |
第2章 材料与方法 | 第25-33页 |
2.1 实验材料 | 第25-26页 |
2.1.1 实验中使用的果蝇品系 | 第25页 |
2.1.2 实验中用到的载体 | 第25页 |
2.1.3 实验中用到的引物 | 第25-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-33页 |
2.2.1 获得CG10483基因CDS序列 | 第26-28页 |
2.2.2 构建pUAST-attB-CG10483载体 | 第28-29页 |
2.2.3 sgRNA表达载体的构建 | 第29-31页 |
2.2.4 显微注射 | 第31页 |
2.2.5 目的转基因果蝇的鉴定及果蝇品系的建立 | 第31-33页 |
2.2.5.1 CG10483基因高表达果蝇品系的建立 | 第31-32页 |
2.2.5.2 CG10483基因无功能突变体果蝇品系的构建 | 第32-33页 |
第3章 结果与分析 | 第33-39页 |
3.1 获得CG10483基因CDS序列 | 第33-34页 |
3.2 获得CG10483基因高表达载体pUAST-attB-CG10483 | 第34页 |
3.3 获得sgRNA表达载体pCDF3-sgRNA | 第34-35页 |
3.4 得到高表达CG10483基因的果蝇品系 | 第35-36页 |
3.5 得到CG10483基因无功能突变的果蝇品系 | 第36-39页 |
讨论 | 第39-42页 |
4.1 检测工具果蝇是否能够正常工作 | 第39页 |
4.2 本实验中所使用的技术对于后续实验的意义 | 第39-41页 |
4.3 XPR1基因在磷酸盐转运中的作用 | 第41页 |
4.4 展望 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-46页 |
致谢 | 第46页 |