| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写词表 | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1 CHS研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1 查尔酮合成酶功能概况 | 第11页 |
| 1.2 查尔酮合成酶的基因结构 | 第11-12页 |
| 1.3 查尔酮合成酶基因进化 | 第12-13页 |
| 1.4 CHS基因表达的调控研究 | 第13页 |
| 1.4.1 CHS表达的调控机理 | 第13页 |
| 1.4.2 CHS表达的诱导因子 | 第13页 |
| 1.5 CHS基因工程与观赏植物的生理代谢 | 第13-14页 |
| 1.5.1 CHS转基因影响观赏植物花色方面的研究 | 第13-14页 |
| 1.5.2 CHS基因工程在观赏植物育性方面的研究 | 第14页 |
| 2 影响彩叶植物叶片呈色机理研究进展 | 第14-18页 |
| 2.1 彩叶植物的定义和分类 | 第14页 |
| 2.2 彩叶植物叶片的呈色机理 | 第14-16页 |
| 2.2.1 遗传因素影响呈色 | 第14-15页 |
| 2.2.2 温度影响呈色 | 第15-16页 |
| 2.3 红花檵木叶色变化研究 | 第16-18页 |
| 2.3.1 叶色返青的现象 | 第17页 |
| 2.3.2 返青前后花青苷含量和细胞液pH值的变化 | 第17-18页 |
| 3 研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 第二章 红花檵木叶片中花色素合成关键酶基因CH的克隆 | 第19-41页 |
| 1 材料与方法 | 第19-41页 |
| 1.1 试验材料 | 第19页 |
| 1.2 试验仪器与试剂 | 第19-21页 |
| 1.2.1 主要试验仪器和设备 | 第19页 |
| 1.2.2 酶和生化试剂 | 第19-20页 |
| 1.2.3 菌株和质粒 | 第20-21页 |
| 1.3 试验方法 | 第21-29页 |
| 1.3.1 红花檵木总RNA的提取 | 第21-24页 |
| 1.3.2 反转录: | 第24-25页 |
| 1.3.3 PCR反应 | 第25页 |
| 1.3.4 PCR产物纯化回收 | 第25-26页 |
| 1.3.5 连接,转化,筛选 | 第26-27页 |
| 1.3.6 菌液PCR验证阳性克隆 | 第27-28页 |
| 1.3.7 质粒的提取和鉴定 | 第28-29页 |
| 1.3.8 序列测定 | 第29页 |
| 1.4 结果与分析 | 第29-39页 |
| 1.4.1 总RNA提取方法的比较 | 第29-31页 |
| (1) RNA样品质量检测 | 第29-30页 |
| (2) RNA样品浓度检测 | 第30-31页 |
| 1.4.2 特异引物扩增、回收、纯化与克隆 | 第31-32页 |
| 1.4.3 克隆产物的序列分析 | 第32-39页 |
| 1.5 小结与讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 温度处理对红花檵木CHS基因表达及叶片呈色的影响 | 第41-48页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 1.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 1.2 试验仪器与试剂 | 第42页 |
| 1.2.1 主要试验仪器设备 | 第42页 |
| 1.2.2 生化试剂 | 第42页 |
| 1.3 试验方法 | 第42-44页 |
| 1.3.1 组培苗的不同温度梯度处理 | 第42-43页 |
| 1.3.2 红花檵木总RNA的提取 | 第43页 |
| 1.3.3 特异引物序列 | 第43页 |
| 1.3.4 特异引物RT-PCR扩增体系与程序 | 第43-44页 |
| 1.3.5 RT-PCR扩增产物检测 | 第44页 |
| 2 温度处理对红花檵木叶片呈色的表达差异分析 | 第44-47页 |
| 2.1 温度处理后叶色变化结果 | 第44-45页 |
| 2.2 温度处理前后红花檵木LcvrCHS1基因的表达分析 | 第45-47页 |
| 3 小结与讨论 | 第47-48页 |
| 第四章 全文总结与创新之处 | 第48-51页 |
| 1 全文总结 | 第48-49页 |
| 1.1 红花檵木RNA提取 | 第48页 |
| 1.2 红花檵木LcvrCHS1基因的克隆 | 第48页 |
| 1.3 温度处理对红花檵木叶片呈色的表达差异性分析 | 第48-49页 |
| 2 文章创新之处 | 第49页 |
| 3 展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 附表 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 个人简历 | 第64页 |
