| 引言 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 目录 | 第12-14页 |
| 英文缩略词表 | 第14-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-38页 |
| 1.1 多发性骨髓瘤治疗的研究进展 | 第16-19页 |
| 1.1.1 多发性骨髓瘤治疗的概述 | 第16页 |
| 1.1.2 多发性骨髓瘤药物治疗的进展 | 第16-19页 |
| 1.2 抗肿瘤药物的作用机制 | 第19-28页 |
| 1.2.1 抑制细胞增殖 | 第20页 |
| 1.2.2 促进细胞分化 | 第20-21页 |
| 1.2.3 促进细胞凋亡 | 第21-23页 |
| 1.2.4 抑制肿瘤细胞的迁移及侵袭 | 第23-24页 |
| 1.2.5 上皮间质转化 | 第24-25页 |
| 1.2.6 抑制血管生成 | 第25-26页 |
| 1.2.7 靶向药物特异性杀伤肿瘤细胞 | 第26-28页 |
| 1.3 MIRNA 的研究进展 | 第28-31页 |
| 1.3.1 miRNA 的生成及作用机制 | 第28-29页 |
| 1.3.2 miRNA 与肿瘤的关系 | 第29-31页 |
| 1.4 MIR-145 的结构及其生物学功能 | 第31-32页 |
| 1.5 MIR-145 相关的信号通路研究 | 第32-36页 |
| 1.5.1 PI3K /AKT 信号通路 | 第32-33页 |
| 1.5.2 ERK 信号通路 | 第33-34页 |
| 1.5.3 p53 相关信号通路 | 第34-35页 |
| 1.5.4 Bcl-2 蛋白家族 | 第35-36页 |
| 1.6 立论依据 | 第36-38页 |
| 第2章 材料与方法 | 第38-64页 |
| 2.1 材料 | 第38-45页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第38页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第38-39页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第39-41页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第41-45页 |
| 2.2 实验方法 | 第45-64页 |
| 2.2.1 CD138＋骨髓瘤细胞的分选 | 第45-46页 |
| 2.2.2 细胞系的培养 | 第46-47页 |
| 2.2.3 miR-145 转染 H929 细胞 | 第47-48页 |
| 2.2.4 RNA 提取纯化 | 第48-49页 |
| 2.2.5 RNA 逆转录 | 第49-50页 |
| 2.2.6 Real-Time PCR | 第50-51页 |
| 2.2.7 MTT 法检测细胞增殖 | 第51-52页 |
| 2.2.8 克隆形成实验 | 第52页 |
| 2.2.9 流式细胞仪分析细胞周期 | 第52页 |
| 2.2.10 TUNEL 法检测凋亡 | 第52-53页 |
| 2.2.11 Caspase 活性分析 | 第53页 |
| 2.2.12 Transwell 细胞侵袭实验 | 第53-54页 |
| 2.2.13 Transwell 细胞迁移实验 | 第54-55页 |
| 2.2.14 ELISA 酶联免疫吸附试验 | 第55-56页 |
| 2.2.15 Western blot 检测蛋白表达 | 第56-58页 |
| 2.2.16 动物实验 | 第58-64页 |
| 第3章 结果 | 第64-88页 |
| 3.1 MIR-145 在 MM 细胞系及 MM 患者血浆的表达 | 第64-66页 |
| 3.2 MIR-145 对 MM 细胞增殖及细胞克隆形成的作用 | 第66-70页 |
| 3.3 MIR-145 对 MM 细胞周期分布的影响 | 第70-72页 |
| 3.4 MIR-145 对 MM 细胞凋亡的影响 | 第72-77页 |
| 3.5 MIR-145 对 MM 细胞迁移及侵袭的影响 | 第77-81页 |
| 3.6 MIR-145 对 PI3K/AKT 信号通路的影响 | 第81-82页 |
| 3.7 MIR-145 对 MM 细胞在小鼠体内成瘤能力的影响 | 第82-88页 |
| 讨论 | 第88-94页 |
| 结论 | 第94-96页 |
| 创新点 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-114页 |
| 作者在学期间所取得的科研成果 | 第114-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
