| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词索引表 | 第8-11页 |
| 1 引言 | 第11-19页 |
| 1.1 口蹄疫研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 口蹄疫流行病学研究 | 第11-12页 |
| 1.1.2 口蹄疫病毒研究进展 | 第12-14页 |
| 1.1.3 口蹄疫疫苗研究进展 | 第14页 |
| 1.2 口蹄疫细胞免疫研究 | 第14-15页 |
| 1.3 口蹄疫体液免疫研究 | 第15-17页 |
| 1.4 细胞对FMDV的模式识别与适应性免疫应答 | 第17-18页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第18-19页 |
| 2 实验材料和方法 | 第19-26页 |
| 2.1 主要实验材料 | 第19页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第19页 |
| 2.3 实验相关试剂的配制 | 第19-22页 |
| 2.3.1 重组菌的培养和诱导表达用液 | 第19-20页 |
| 2.3.2 SDS-PAGE 相关溶液 | 第20页 |
| 2.3.3 电洗脱用液 | 第20-21页 |
| 2.3.4 溶解细胞色素 C 与番泻苷 B 用液的配制 | 第21-22页 |
| 2.4 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.4.1 重组口蹄疫病毒 VP1-VP4 蛋白的制备 | 第22页 |
| 2.4.2 菌株选择 | 第22页 |
| 2.4.3 重组菌的诱导表达 | 第22页 |
| 2.4.4 SDS-PAGE 凝胶的制备 | 第22-23页 |
| 2.4.5 表达产物蛋白的 SDS- PAGE 电泳 | 第23页 |
| 2.4.6 目的蛋白的回收纯化及电洗脱 | 第23-24页 |
| 2.4.7 蛋白质浓度的测定 | 第24页 |
| 2.5 实验动物的分组与处理 | 第24-25页 |
| 2.6 待检测血清样品的收集与检测 | 第25页 |
| 2.7 统计处理 | 第25-26页 |
| 3.实验结果与分析 | 第26-43页 |
| 3.1 实验结果 | 第26-37页 |
| 3.1.1 Pet32a-VP1-VP4 原核表达、纯化及纯度鉴定 | 第26页 |
| 3.1.2 SR-A 抑制剂降低免疫 VP1-VP4 蛋白小鼠血清 IFN-γ和 IL-4 含量 | 第26-28页 |
| 3.1.3 抑制 SR-A 对免疫 VP1-VP4 抗原小鼠体液免疫应答的作用 | 第28-30页 |
| 3.1.4 清除体内 CD8α+ DCs 对免疫 VP1-VP4 蛋白小鼠血清 IFN-γ和 IL-4 含量以及体液免疫应答的作用 | 第30-32页 |
| 3.1.5 清除 CD8α+ DCs 对免疫 VP1-VP4 蛋白小鼠血清抗体效价的影响 | 第32-33页 |
| 3.1.6 注射 VP1-VP4 蛋白试验疫苗诱导的免疫应答 | 第33-37页 |
| 3.2 分析 | 第37-43页 |
| 4 结论 | 第43-44页 |
| 4.1 在体内情况下，SR-A 识别 VP1-VP4 对小鼠启动 IFN-γ应答具有负调节作用 | 第43页 |
| 4.2 CD8α~+DCs 在体内情况下，主要通过 MHC-II 类分子途径激活 CD4~+T 细胞，产生以IL-4 为特征的细胞免疫应答 | 第43页 |
| 4.3 体内抑制 SR-A 或清除体内 CD8α~+DCs 导致免疫应答转向 Th1 应答 | 第43页 |
| 4.4 体内抑制 SR-A 或清除体内 CD8α~+DCs 有利于粘膜免疫应答 | 第43页 |
| 4.5 番泻苷 B 或单宁酸作为口蹄疫蛋白质疫苗的佐剂成分是可行的 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
| 作者简历 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
