摘要 | 第2-4页 |
Abstract | 第4-6页 |
符号说明 | 第9-10页 |
第一章 RAD54启动子的选择 | 第10-35页 |
1 材料与方法 | 第10-20页 |
1.1 材料 | 第10-11页 |
1.2 方法 | 第11-20页 |
1.2.1 酵母基因组DNA提取 | 第11页 |
1.2.2 RAD54启动子序列 | 第11-12页 |
1.2.3 PCR扩增RAD54启动子 | 第12-18页 |
1.2.4 R1558和R406启动子调控的重组yEGFP酵母细胞的建立 | 第18-19页 |
1.2.5 实验研究 | 第19页 |
1.2.6 统计方法 | 第19-20页 |
2 结果 | 第20-33页 |
2.1 RAD54调控的yEGFP酵母报告载体 | 第20-23页 |
2.2 R1558启动子调控的重组yEGFP酵母细胞 | 第23-25页 |
2.3 R406启动子调控的重组yEGFP酵母细胞 | 第25-26页 |
2.4 化学诱变原对2种不同RAD54启动子调控的重组酵母细胞的评价结果 | 第26-33页 |
2.4.1 荧光显微镜下观察 | 第26-27页 |
2.4.2 DNA烷基化诱变原的评价 | 第27-28页 |
2.4.3 DNA发生断裂诱变原的评价 | 第28-29页 |
2.4.4 抑制DNA合成酶或拓扑异构酶诱变原的评价 | 第29-30页 |
2.4.5 非基因毒性化学物的评价 | 第30-33页 |
3 讨论 | 第33-35页 |
第二章 RAD54全启动子调控的双信号发光酵母细胞的建立 | 第35-47页 |
1 材料和方法 | 第35-40页 |
1.1 材料 | 第35-36页 |
1.2 方法 | 第36-39页 |
1.2.1 DsRed-Express-2基因的克隆与表达 | 第36-38页 |
1.2.2 GPD驱动的DsRed-Express-2酵母报告载体的构建 | 第38-39页 |
1.3 DsRed-Express-2在酵母细胞中的表达 | 第39-40页 |
1.3.1 酵母细胞的转化 | 第39-40页 |
1.3.2 DsRed-Express-2表达 | 第40页 |
2 结果 | 第40-45页 |
2.1 DsRed-Express-2基因的克隆 | 第40-41页 |
2.2 GPD驱动的DsRed-Express-2酵母报告载体 | 第41-43页 |
2.3 DsRed-Express-2在酵母细胞中的表达 | 第43-45页 |
2.4 荧光显微镜下观察 | 第45页 |
3 讨论 | 第45-47页 |
第三章 化学诱变原对RAD54启动子调控的双信号发光酵母细胞联合基因毒性的研究 | 第47-61页 |
1. 材料和方法 | 第47-49页 |
1.1 材科 | 第47-49页 |
1.1.1 化学诱变原致突变作用阈浓度的确立 | 第47-48页 |
1.1.2 化学物联合致突变的实验 | 第48-49页 |
2. 结果 | 第49-58页 |
2.1 单因素研究结果 | 第49-50页 |
2.2 MMS、瘤可宁和顺铂联合基因毒性研究结果 | 第50-55页 |
2.2.1 方差分析 | 第51-52页 |
2.2.2 MMS、瘤可宁和顺铂联合基因毒性研究响应面分析 | 第52-55页 |
2.3 5-Fu、喜树碱和羟基脲联合基因毒性研究结果 | 第55-58页 |
2.3.1 方差分析 | 第55-56页 |
2.3.2 5-Fu、喜树碱和羟基脲联合基因毒性研究响应面分析 | 第56-58页 |
3. 讨论 | 第58-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
综述 | 第66-73页 |
参考文献 | 第70-73页 |
附录 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文情况 | 第75-76页 |