| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 前言 | 第12-64页 |
| 1.1 DNA生物传感器 | 第13-27页 |
| 1.1.1 核酸 | 第14-18页 |
| 1.1.2 DNA传感器的检测方法 | 第18-27页 |
| 1.2 石英晶体微天平 | 第27-45页 |
| 1.2.1 石英晶体微天平原理 | 第27-31页 |
| 1.2.2 石英晶体微天平的构成及特点 | 第31-33页 |
| 1.2.3 QCM生物传感器在生化分析中的应用 | 第33-45页 |
| 1.3 荧光光谱检测技术 | 第45-56页 |
| 1.3.1 荧光产生机理 | 第45-46页 |
| 1.3.2 DNA荧光探针及其在生化分析中的应用研究 | 第46-56页 |
| 1.4 等温循环放大技术及DNA传感分析的研究进展 | 第56-63页 |
| 1.4.1 滚环复制放大 | 第56-58页 |
| 1.4.2 链替代聚合放大 | 第58-59页 |
| 1.4.3 核酸内切酶循环放大 | 第59-61页 |
| 1.4.4 核酸外切酶循环放大 | 第61-63页 |
| 1.5 本课题的意义和研究内容 | 第63-64页 |
| 第二章 基于酶循环信号放大技术QCM检测ATP研究 | 第64-88页 |
| 2.1 实验部分 | 第65-70页 |
| 2.1.1 试剂 | 第65-67页 |
| 2.1.2 仪器 | 第67页 |
| 2.1.3 纳米金的制备 | 第67页 |
| 2.1.4 纳米金生物条码的制备 | 第67-68页 |
| 2.1.5 DNA标记磁性微球 | 第68页 |
| 2.1.6 纳米金磁性微球复合物的制备 | 第68页 |
| 2.1.7 芯片的清洗及修饰 | 第68页 |
| 2.1.8 细胞内ATP的提取 | 第68-69页 |
| 2.1.9 等温链替代循环放大反应 | 第69页 |
| 2.1.10石英晶体微天平检测 | 第69页 |
| 2.1.11高效液相色谱法（HPLC）检测ATP | 第69-70页 |
| 2.1.12聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第70页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第70-86页 |
| 2.2.1 基于等温酶循环放大技术的石英晶体微天平检测原理 | 第70-71页 |
| 2.2.2 金纳米粒子的表征 | 第71-72页 |
| 2.2.3 纳米金生物条码的紫外光谱表征 | 第72-73页 |
| 2.2.4 可行性研究 | 第73-76页 |
| 2.2.5 非特异性吸附研究 | 第76-77页 |
| 2.2.6 实验条件的优化 | 第77-82页 |
| 2.2.7 酶循环信号放大QCM检测ATP的灵敏度 | 第82-85页 |
| 2.2.8 酶循环信号放大QCM检测ATP的选择性 | 第85-86页 |
| 2.2.9 癌细胞内ATP的检测 | 第86页 |
| 2.3 小结 | 第86-88页 |
| 第三章 基于自组装信号放大技术QCM检测DNA的研究 | 第88-97页 |
| 3.1 实验部分 | 第89-90页 |
| 3.1.1 试剂 | 第89页 |
| 3.1.2 仪器 | 第89-90页 |
| 3.1.3 芯片修饰 | 第90页 |
| 3.1.4 石英晶体微天平检测 | 第90页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第90-96页 |
| 3.2.1 基于自组装信号放大技术的石英晶体微天平检测DNA原理 | 第90-91页 |
| 3.2.2 可行性研究 | 第91-92页 |
| 3.2.3 实验条件的优化 | 第92-93页 |
| 3.2.4 自组装信号放大QCM检测DNA的灵敏度 | 第93-95页 |
| 3.2.5 自组装放大QCM检测DNA的选择性 | 第95-96页 |
| 3.3 小结 | 第96-97页 |
| 第四章 基于等温循环链置换放大荧光检测ATP的研究 | 第97-112页 |
| 4.1 实验部分 | 第98-100页 |
| 4.1.1 试剂 | 第98-99页 |
| 4.1.2 仪器 | 第99页 |
| 4.1.3 DNA标记磁性微球 | 第99-100页 |
| 4.1.4 等温循环链置换聚合放大反应 | 第100页 |
| 4.1.5 荧光光谱检测 | 第100页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第100-111页 |
| 4.2.1 基于等温循环链置换聚合放大反应检测ATP原理 | 第100-101页 |
| 4.2.2 DNA标记磁珠的紫外光谱表征 | 第101-102页 |
| 4.2.3 可行性研究 | 第102-103页 |
| 4.2.4 实验条件的优化 | 第103-106页 |
| 4.2.5 荧光检测ATP的灵敏度检测 | 第106-110页 |
| 4.2.6 ATP的选择性检测 | 第110-111页 |
| 4.2.7 实际样品中ATP的检测 | 第111页 |
| 4.3 小结 | 第111-112页 |
| 第五章 基于滚环复制与自组装循环放大荧光检测DNA的研究 | 第112-130页 |
| 5.1 实验部分 | 第113-115页 |
| 5.1.1 试剂 | 第113-114页 |
| 5.1.2 仪器 | 第114页 |
| 5.1.3 DNA级联循环放大反应 | 第114-115页 |
| 5.1.4 荧光光谱检测 | 第115页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第115-128页 |
| 5.2.1 基于DNA级联循环放大反应检测原理 | 第115-116页 |
| 5.2.2 可行性研究 | 第116-118页 |
| 5.2.3 信号放大性能的研究 | 第118-119页 |
| 5.2.4 实验条件的优化 | 第119-122页 |
| 5.2.5 基于级联信号放大荧光检测DNA的灵敏度 | 第122-127页 |
| 5.2.6 DNA检测的选择性 | 第127-128页 |
| 5.3 小结 | 第128-130页 |
| 第六章 基于滚环复制信号放大荧光检测DNA甲基化的研究 | 第130-142页 |
| 6.1 实验部分 | 第131-133页 |
| 6.1.1 试剂 | 第131-132页 |
| 6.1.2 仪器 | 第132页 |
| 6.1.3 环状DNA的制备 | 第132页 |
| 6.1.4 滚环复制放大反应检测甲基化酶 | 第132-133页 |
| 6.1.5 荧光光谱检测 | 第133页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第133-140页 |
| 6.2.1 基于滚环复制信号放大反应检测原理 | 第133-134页 |
| 6.2.2 可行性研究 | 第134-135页 |
| 6.2.3 实验条件的优化 | 第135-137页 |
| 6.2.4 基于滚环复制信号放大荧光检测DNA甲基化酶的灵敏度 | 第137-138页 |
| 6.2.5 药物对DNA甲基化酶的活性研究 | 第138-140页 |
| 6.2.6 DNA甲基化酶的选择性研究 | 第140页 |
| 6.3 小结 | 第140-142页 |
| 参考文献 | 第142-171页 |
| 结论 | 第171-173页 |
| 致谢 | 第173-174页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第174-176页 |
