| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-23页 |
| 1.1 植物叶绿体和光合作用 | 第9-10页 |
| 1.2 叶色突变体的类型 | 第10-12页 |
| 1.3 叶色突变体的来源 | 第12-15页 |
| 1.3.1 自发突变 | 第13页 |
| 1.3.2 人工诱变 | 第13-15页 |
| 1.4 叶色突变的分子机制 | 第15-19页 |
| 1.4.1 叶绿素生物合成相关基因突变 | 第16-17页 |
| 1.4.2 叶绿素生物降解相关基因突变 | 第17-18页 |
| 1.4.3 叶绿体分化与发育相关基因突变 | 第18-19页 |
| 1.4.4 其他生物学代谢途径 | 第19页 |
| 1.5 叶色突变体的应用 | 第19-21页 |
| 1.5.1 叶色突变体在功能基因组学研究中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5.2 叶色突变体在光形态建成中的应用 | 第20页 |
| 1.5.3 作为标记性状应用于水稻杂交育种 | 第20-21页 |
| 1.5.4 叶色突变体在高光效育种中的应用 | 第21页 |
| 1.5.5 叶色突变体在植物病理中的应用 | 第21页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第21-23页 |
| 2 水稻白条纹叶白穗突变体wp4的形态学、生理学和细胞学研究 | 第23-29页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验材料与种植方法 | 第23页 |
| 2.1.2 重要农艺性状的考察统计分析 | 第23页 |
| 2.1.3 叶绿素含量测定 | 第23-24页 |
| 2.1.4 净光合速率测定 | 第24页 |
| 2.1.5 叶绿体显微结构观察 | 第24页 |
| 2.2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.2.1 突变体wp4的形态学特征 | 第24页 |
| 2.2.2 突变体wp4叶片与幼穗中叶绿素含量显著低于野生型 | 第24-26页 |
| 2.2.3 wp4叶片光合速率降低 | 第26页 |
| 2.2.4 wp4叶绿体结构发育异常 | 第26-27页 |
| 2.3 小结 | 第27-29页 |
| 3 水稻白条纹叶白穗突变体基因wp4的图位克隆 | 第29-45页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-36页 |
| 3.1.1 实验材料与种植方法 | 第29页 |
| 3.1.2 DNA提取方法（SDS法） | 第29-30页 |
| 3.1.3 SSR、Indel及dCAPS标记开发 | 第30页 |
| 3.1.4 分子标记分析与基因定位 | 第30页 |
| 3.1.5 候选基因分析 | 第30-31页 |
| 3.1.6 载体构建 | 第31-32页 |
| 3.1.7 基因转化 | 第32-33页 |
| 3.1.8 水稻原生质体分离与转化 | 第33-34页 |
| 3.1.9 总RNA提取与逆转录 | 第34-35页 |
| 3.1.10 Real time RT-PCR | 第35-36页 |
| 3.2 结果与分析 | 第36-42页 |
| 3.2.1 wp4突变表型遗传分析 | 第36-37页 |
| 3.2.2 WP4基因的定位 | 第37-38页 |
| 3.2.3 WP4候选基因分析 | 第38-39页 |
| 3.2.4 转基因验证 | 第39-40页 |
| 3.2.5 WP4基因的组织表达 | 第40-41页 |
| 3.2.6 WP4编码蛋白的亚细胞定位 | 第41页 |
| 3.2.7 叶绿素合成、叶绿体发育相关基因的表达 | 第41-42页 |
| 3.3 小结 | 第42-45页 |
| 4 总结与讨论 | 第45-49页 |
| 4.1 全文总结 | 第45-46页 |
| 4.1.1 突变体wp4形态学、生理学及细胞学特征 | 第45页 |
| 4.1.2 wp4突变性状的遗传分析及突变基因的图位克隆 | 第45页 |
| 4.1.3 WP4基因的分子生物学特征及调控叶色的机理研究 | 第45-46页 |
| 4.2 讨论 | 第46-49页 |
| 4.2.1 wp4可能是表观突变体 | 第46-47页 |
| 4.2.2 WP4编码水稻腺苷酸激酶 | 第47-48页 |
| 4.2.3 WP4基因的下一步研究计划 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
