| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-21页 |
| 1 集胞藻PCC 6803概述 | 第10-11页 |
| 2 集胞藻PCC 6803遗传特点 | 第11-13页 |
| 3 集胞藻PCC 6803外源DNA的转化 | 第13-14页 |
| 4 集胞藻PCC 6803基因功能的研究现状 | 第14-15页 |
| 5 光合系统的结构 | 第15-17页 |
| 6 光状态转换 | 第17-18页 |
| 7 双组分信号转导系统 | 第18-19页 |
| 8 课题的设计及意义 | 第19-21页 |
| 引言 | 第21-22页 |
| 材料与方法 | 第22-42页 |
| 1 实验材料 | 第22-26页 |
| ·菌株与质粒 | 第22页 |
| ·培养基 | 第22页 |
| ·LB培养基 | 第22页 |
| ·BG11培养基 | 第22页 |
| ·所用试剂 | 第22-25页 |
| ·主要仪器 | 第25-26页 |
| 2 实验方法 | 第26-42页 |
| ·Synechocystis sp.PCC 6803野生藻种纯化 | 第26-27页 |
| ·野生藻种纯度鉴定 | 第26页 |
| ·藻种的纯化 | 第26-27页 |
| ·蓝藻总DNA的提取 | 第27页 |
| ·pBlue-slr1122-lost-Km的分子克隆 | 第27-30页 |
| ·PCR扩增 | 第27-28页 |
| ·pBlue-slr1122质粒的构建 | 第28-29页 |
| ·pBlue-slr1122-lost质粒的构建 | 第29-30页 |
| ·pBlue-slr1122-lost-km质粒的构建 | 第30页 |
| ·克隆中用到的方法 | 第30-31页 |
| ·从琼脂糖凝胶中回收DNA | 第30页 |
| ·感受态细胞的制备和质粒转化 | 第30页 |
| ·碱裂解法提取质粒 | 第30-31页 |
| ·pBlue-slr1122-lost-Km质粒自然转化集胞藻PCC 6803及突变体的筛选 | 第31页 |
| ·突变体的鉴定检测 | 第31-32页 |
| ·藻的培养条件 | 第32页 |
| ·生长曲线的测定 | 第32-33页 |
| ·藻内含物的测定 | 第33页 |
| ·叶绿素a(Chl a)含量的测定 | 第33页 |
| ·藻蓝蛋白C-PC含量测定 | 第33页 |
| ·Real Time RT-PCR与RT-PCR | 第33-38页 |
| ·室温吸收光谱分析 | 第38页 |
| ·室温叶绿素荧光的测定 | 第38-39页 |
| ·HPLC法分析色素变化 | 第39页 |
| ·slr1122与sll1672蛋白形成复合物研究 | 第39-42页 |
| ·pET-slr1122及pCDF-sll1672质粒的构建 | 第39-41页 |
| ·slr1122与sll1672蛋白表达与纯化 | 第41页 |
| ·slr1122与sll1672蛋白复合 | 第41-42页 |
| 结果与分析 | 第42-61页 |
| 1 突变体质粒构建检测 | 第42页 |
| 2 不同培养条件下△slr1122与WT生长曲线比较 | 第42-46页 |
| 3 △slr1122与WT中叶绿素与藻胆蛋白含量比较 | 第46-47页 |
| 4 △slr1122与WT吸收光谱比较 | 第47-49页 |
| 5 利用HPLC分析△slr1122与WT色素 | 第49-52页 |
| 6 slr1122的缺失对藻体内相关基因转录水平的影响 | 第52-55页 |
| 7 slr1122的缺失对藻的光合作用的影响 | 第55-58页 |
| 8 slr1122与△N-sll1672蛋白形成复合物及ATP的影响 | 第58-61页 |
| 小结与讨论 | 第61-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 附录 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
