| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 人脐带间充质干细胞的分离和培养 | 第11-19页 |
| 1 材料 | 第11-12页 |
| ·主要仪器设备 | 第11-12页 |
| ·实验标本 | 第12页 |
| ·实验试剂及耗材 | 第12页 |
| ·实验配液 | 第12页 |
| 2 实验方法 | 第12-14页 |
| ·手工机械+复合酶消化法分离hUC-MSCs | 第12-13页 |
| ·hUC-MSCs的原代及传代培养 | 第13页 |
| ·hUC-MSCs的冻存及复苏 | 第13页 |
| ·hUC-MSCs的生长曲线测定 | 第13-14页 |
| 3 结果 | 第14-16页 |
| ·分离和培养hUC-MSCs | 第14页 |
| ·hUC-MSCs的冷冻复苏 | 第14-15页 |
| ·hUC-MSCs生长曲线的测定 | 第15-16页 |
| 4 讨论 | 第16-17页 |
| 参考文献 | 第17-19页 |
| 第二章 人脐带间充质干细胞的的生物学特性 | 第19-29页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| ·实验动物 | 第19-20页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第20页 |
| ·实验配液 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-22页 |
| ·流式细胞术鉴定hUC-MSCs表面抗原 | 第20页 |
| ·hUC-MSCs成脂诱导分化及鉴定 | 第20-21页 |
| ·hUC-MSCs成骨诱导分化及鉴定 | 第21页 |
| ·hUC-MSCs成软骨诱导分化及鉴定 | 第21页 |
| ·β-半乳糖苷酶染色检测hUC-MSCs的衰老 | 第21页 |
| ·软琼脂实验检测hUC-MSCs的致瘤性 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-25页 |
| ·hUC-MSCs的表面抗原测定 | 第22页 |
| ·hUC-MSCs的多项分化潜能 | 第22-23页 |
| ·hUC-MSCs的衰老测定 | 第23-24页 |
| ·hUC-MSCs的软琼脂致瘤性测定 | 第24-25页 |
| 4 讨论 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-29页 |
| 第三章 人脐带间充质干细胞体外培养过程中的表观遗传学改变 | 第29-42页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·实验动物 | 第29-30页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第30页 |
| ·培养液 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-38页 |
| ·MSP检测hUC-MSCs中特定基因的甲基化状态 | 第30-34页 |
| ·RT-PCR检测hUC-MSCs中MGMT的转录 | 第34-36页 |
| ·Western Blot检测hUC-MSCs中MGMT蛋白表达 | 第36-38页 |
| 3 结果 | 第38-39页 |
| ·hUC-MSCs体外培养对特定基因甲基化的影响 | 第38-39页 |
| ·hUC-MSCs体外培养对MGMT mRNA转录的影响 | 第39页 |
| ·hUC-MSCs体外培养对MGMT蛋白表达的影响 | 第39页 |
| 4 讨论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 文献综述 | 第43-53页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 致谢 | 第53-55页 |
| 攻读学位期间已发表学术论文 | 第55页 |
