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大叶秦艽(Gentiana macrophylla Pall.)的组织培养及离体诱导多倍体的研究

摘要第1-5页
Abstract第5-11页
第一章 大叶秦艽离体组织培养第11-30页
 1 体细胞胚胎发生研究现状第11-20页
   ·胚胎发生的普遍性第11-13页
   ·胚状体的发生途径和特征第13-14页
     ·直接从外植体上发生第13页
     ·从愈伤组织上发生第13-14页
     ·从游离的单细胞发生第14页
   ·影响胚状体发生和发育的因素第14-18页
     ·供体植物的基因型第15页
     ·外植体的来源和培养物的生理状况第15-16页
     ·外源激素对体细胞胚发生的调控第16-17页
     ·培养基的氮源第17-18页
     ·天然提取物与活性炭对胚状体形成的作用第18页
   ·体细胞胚形成的基因表达调控第18-19页
   ·秦艽组织培养研究的概况及本研究的目的第19-20页
 2 材料与方法第20-21页
   ·无菌植物材料的获得第20页
   ·愈伤组织的诱导第20页
   ·胚性愈伤组织的诱导和继代培养第20-21页
   ·胚状体发育成株第21页
   ·炼苗移栽第21页
 3 结果与分析第21-27页
   ·无菌植物材料的获得第21-22页
   ·愈伤组织的诱导第22-24页
   ·胚性愈伤组织的诱导和继代培养第24-25页
   ·体细胞胚的发育第25-27页
   ·炼苗移栽第27页
 4 结论第27页
 5 讨论第27-30页
第二章 秦艽原生质体培养第30-50页
 1 植物原生质体培养的研究现况第30-35页
   ·原生质体培养技术在遗传操作中的重要性第30-31页
   ·影响原生质体培养的因素第31-34页
     ·影响原生质体产量和活力的因素第31-33页
       ·原生质体的材料来源及生理状态第31-32页
       ·原生质体的分离第32-33页
     ·影响原生质体分裂的因素第33-34页
       ·培养基第33页
       ·外源激素第33-34页
       ·培养密度第34页
       ·原生质体培养方法第34页
   ·秦艽原生质体培养研究现况及本研究的目的第34-35页
 2 材料和方法第35-36页
   ·植物材料第35页
   ·原生质体的分离及纯化第35-36页
   ·原生质体培养第36页
   ·愈伤组织形成及试管苗的分化第36页
 3 结果与分析第36-44页
   ·原生质体的分离及纯化第36-39页
     ·不同纤维素酶对原生质体酶解效果的影响第36-37页
     ·不同浓度果胶酶对原生质体酶解效果的影响第37页
     ·不同取材时间对原生质体游离的影响第37-38页
     ·低温预处理对原生质体游离和分裂的影响第38-39页
   ·原生质体的早期分裂及其影响因素第39-43页
     ·原生质体培养及其早期分裂第39页
     ·渗透压对原生质体分裂频率的影响第39-40页
     ·基本培养基对原生质体分裂频率的影响第40页
     ·原生质体密度对其分裂频率的影响第40-41页
     ·不同激素组合对原生质体分裂频率的影响第41-43页
   ·不同激素组合对愈伤组织再分化的影响第43-44页
 4 结论第44-45页
 5 讨论第45-50页
   ·影响原生质体培养的内在因素第45-46页
   ·酶液组成对原生质体产率和活力的影响第46-47页
   ·原生质体的接种密度、培养基和培养方法对原生质体分裂的影响第47-48页
   ·原生质体培养中的粘连现象第48-50页
第三章 大叶秦艽离体多倍体的诱导第50-78页
 1 药用植物离体多倍体诱导研究概述第50-58页
   ·多倍体在中药材生产上的应用优势第50-51页
     ·抗性增强第50-51页
     ·药用活性成分含量高第51页
   ·离体条件下多倍体的诱导第51-58页
     ·离体条件下的诱导方法第51-53页
       ·液体培养基浸泡法第51-52页
       ·固体培养基法第52-53页
       ·用棉球蘸取秋水仙素溶液覆盖于组织块上第53页
     ·影响植物离体组织加倍的因素第53-56页
       ·基因型第53-54页
       ·外植体的种类第54-55页
       ·诱导组织块的大小第55页
       ·培养基中激素种类和浓度第55-56页
     ·多倍体植株的鉴定第56-58页
       ·形态鉴定法第56页
       ·细胞学鉴定法第56-57页
       ·染色体计数法第57页
       ·分子水平的鉴定第57-58页
 2 秦艽多倍体的研究现况及本研究的目的第58页
 3 材料与方法第58-62页
   ·实验材料第58-59页
   ·实验设计和方法第59-62页
     ·培养基第59页
     ·培养条件第59-61页
       ·秋水仙素液体浸渍法第59-60页
       ·秋水仙素加入培养基法第60-61页
     ·多倍体的检查第61-62页
       ·形态学变化第61页
       ·细胞学观察第61-62页
 4 结果与分析第62-73页
     ·用愈伤组织诱导多倍体的结果第62-67页
       ·用秋水仙素液体浸渍法处理的结果第62-65页
       ·用秋水仙素加入培养基法处理的结果第65-67页
     ·用初见分化的愈伤组织诱导多倍体的结果第67-70页
       ·用秋水仙素液体浸渍法处理的结果第67-69页
       ·用秋水仙素加入培养基法处理的结果分析第69-70页
     ·不同外植体对多倍体诱导的比较第70页
     ·多倍体及变异株诱导结果第70-73页
       ·形态学变化第70-71页
       ·细胞学鉴定第71-73页
 5 结论第73-74页
 6 讨论第74-78页
   ·诱导材料的选择第74-75页
   ·秋水仙素处理离体材料的浓度与时间组合的选择第75-76页
   ·秋水仙素处理离体材料的方法选择第76-77页
   ·多倍体鉴定的方法问题第77-78页
参考文献第78-89页
图版说明第89-94页
致谢第94页

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